골격근 세포주에서 Ionomycin 처리로 인한 단일 세포 Ca2+ 변화를 구별하기 위한 광대역 전기 분광학 2부
Sep 27, 2023
4. 토론
그림 3b에서 칼슘과 관련된 형광의 분포는 Ionomycin 처리 후 더 높은 비율로 정점에 도달하고 더 넓게 퍼지며, 이는 처리로 인한 칼슘의 증가와 일치합니다. 전기중성 이온운반체로서의 이오노마이신의 알려진 작용에 기초하여, 세포는 이오노마이신 제거 후 세포외 칼슘을 내부로 신속하게 운반한 다음 정상적인 세포질 농도를 회복할 것으로 예상됩니다[27,28]. 세포 내에서 Ca2+ 조작을 모니터링하는 또 다른 일반적인 방법은 나노초 펄스 전기장(nsPES)으로, 신호 크기와 극성에 따라 작은 전기 자극제를 전달하여 세포 원형질막에 기공을 생성합니다[29]. 세포 내 Ca2+ 증가를 조사하기 위한 이 분야의 최근 연구에서는 자당 분자의 존재가 일반적으로 세포내 Ca2+ 증가와 관련된 팽창 반응을 지연시킬 수 있음을 보여주었습니다. 그러나 이는 도입된 외부 농도와 연구 세포 유형에 존재하는 전압 개폐 채널에 따라 달라질 수 있습니다[30,31]. 우리의 연구에서와 마찬가지로, 이는 세포질 Ca2+를 증가시키기 위한 구배를 생성하는 데 확립되었지만 치료 후 세포 내의 더 깊은 막과 구획에 대한 이해 효과가 적다는 것을 보여줍니다[32]. 칼슘 변화는 이오노마이신 치료와 관련된 주요 요인이지만 IL{13}}[33,34] 또는 CAI[35]의 발현을 포함하여 몇 가지 장기적인 변화가 나타날 수 있습니다. 그러나 이는 단기적으로 영향을 미칠 가능성이 낮습니다. 세포 내 Ca2+ 기능의 리드미컬한 특성으로 인해 세포질 수준의 조절은 근형질 세망의 저장 및 방출을 통해 여러 단백질에 의해 신중하게 제어됩니다. 이 중요한 시스템을 기반으로 전체 분포가 증가하는 동안 일부 세포는 초기 값과 일치하는 형광으로 되돌아갈 것으로 예상됩니다. 형광의 빠른 피크와 그에 따른 정체 현상은 이오노마이신 치료 후 회복 속도가 느려지기 전에 세포질 칼슘의 빠른 흐름을 관찰한 이전 연구와 일치합니다[36].
Cistanche는 항피로 및 체력 강화제 역할을 할 수 있으며 실험 연구에 따르면 Cistanche tubeulosa 달임은 체중을 견디는 수영 쥐에서 손상된 간 간세포 및 내피 세포를 효과적으로 보호하고 NOS3 발현을 상향 조절하며 간 글리코겐을 촉진할 수 있는 것으로 나타났습니다. 합성하여 항피로 효능을 발휘합니다. 페닐에타노이드 글리코시드가 풍부한 Cistanche tubeulosa 추출물은 ICR 생쥐의 혈청 크레아틴 키나제, 젖산 탈수소효소 및 젖산 수치를 크게 감소시키고 헤모글로빈(HB) 및 포도당 수치를 증가시킬 수 있으며, 이는 근육 손상을 감소시켜 항피로 역할을 할 수 있습니다. 생쥐의 에너지 저장을 위한 젖산 농축을 지연시키는 것입니다. 복합 Cistanche Tubulosa 정제는 쥐의 체중 부하 수영 시간을 유의하게 연장하고 간 글리코겐 보유량을 증가시키며 운동 후 혈청 요소 수치를 감소시켜 항피로 효과를 나타냈습니다. 시스탄치스 달임은 운동하는 쥐의 지구력을 향상시키고 피로 해소를 촉진할 수 있으며, 부하 운동 후 혈청 크레아틴 키나아제의 상승을 감소시키고 운동 후 쥐의 골격근 미세구조를 정상으로 유지하는 효과가 있음을 나타냅니다. 체력 강화 및 피로 회복 효과가 있습니다. Cistanchis는 또한 아질산염에 중독된 쥐의 생존 시간을 크게 연장하고 저산소증과 피로에 대한 내성을 강화했습니다.
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마찬가지로, 전기 측정을 보면 증가는 세포질 Ca{0}} 증가와 일치하며 추출된 값은 유사한 세포 변화에 대한 이전 측정과 일치합니다. UNT 셀의 값은 이전에 발표된 피팅 값 0.22 S/m 및 9.49 ε0[21]과 규모 면에서 비슷합니다. UNT(n=51) 및 TRT(n=20) 셀에 대한 이러한 값 간의 통계적 비교는 전도도에 대한 상당한 증가가 존재하고 유전율에 대한 상당한 감소가 존재함을 보여줍니다. 작은 규모의 변화는 이오노마이신 수송 복합체 제거 후 예상되는 회복 패턴과 일치합니다. 세포 생존력을 유지하기 위해 건강한 집단에서는 확립된 동안 칼슘의 변화가 최소화됩니다. 전도도와 유전율에서 관찰된 변화는 이온의 증가와 일치하며, 이는 세포질 전체에 걸쳐 전하의 분포가 더욱 균일해지게 만듭니다. 초기 Ca2+ 영상 데이터를 기반으로 모든 이오노마이신 처리된 세포가 증가된 세포내 Ca2+ 농도를 유지하는 것은 아니므로 UNT와 TRT 그룹 간에 상당한 중복이 발생한다는 것이 이전에 언급되었습니다. 이 연구는 세포질 변화에 초점을 맞추고 있지만 칼슘 관리의 항상성은 근형질 세망에서도 일어난다는 점에 유의하는 것도 중요합니다. 그러나 보고된 측정값의 광대역 특성으로 인해 다른 구획의 변화는 광범위한 주파수에서 포착됩니다.
이전 연구에서는 만성 산화 스트레스에 노출되었을 때 세포사멸이 시작되기 전에 미토콘드리아에 대한 산화 손상과 세포 내 활성 산소종(ROS) 및 Ca{0}}의 범람을 가정했습니다[37]. 생리학적으로 골격근의 Ca2+ 수준과 ROS의 균형을 유지하고 산화 스트레스의 영향을 완화하는 능력 사이에는 잘 확립된 연관성이 있습니다. 당연히 세포 내 Ca2+ 고도에서 관찰된 스펙트럼 변경, 즉 MHz 범위에서 ΔS11이 증가한 후 GHz 범위가 낮아지고 kHz 범위에서 ΔS21의 음수가 적어지는 현상은 비슷합니다. 장기간 산화 스트레스에 노출된 L6 세포의 세포에 적용됩니다[21]. 이전 연구에서는 Ca2+가 산화 스트레스에 노출된 세포를 구별하는 주요 요인으로 식별한 반면, 이 연구에서는 모델링을 통해 칼슘을 구별하는 능력을 통해 Ca2+가 산화 스트레스에 미치는 더 온화하지만 눈에 띄는 기여를 보여줍니다. 내부 유전 특성. 또는 개별 세포 불투명도를 특성화하기 위해 1MHz ~ 300kHz의 임피던스 비율을 사용하는 작업에서도 칼슘 이온 운반체 노출로 인한 호중구의 변화를 측정할 수 있는 능력이 나타났습니다[38]. 이 작업은 처리량이 더 높으므로 샘플 크기도 더 높습니다. 그러나 이는 혈액 세포에만 국한되며 연구 대상 집단을 특성화하기 위한 크기 및 불투명도 분석으로 제한됩니다. 이 연구는 더 적은 수의 주파수에 의존하기보다는 주파수 값의 전체 스펙트럼을 측정함으로써 이오노마이신에 의해 유발된 Ca{15}} 수준 증가로 인한 복잡하고 다면적인 변화를 나타내는 유전 특성의 포착을 보여줍니다.
세포질 Ca{0}} 변화를 식별하는 능력은 DMD, 악액질 및 근육감소증 발생 과정과 같은 많은 관련 골격근 질환에 대한 이해를 높이는 데 도움이 될 가능성이 있습니다[2]. 이전에 발표된 연구에서 칼슘 유입이 장기적인 산화 스트레스가 근육 세포의 전기적 특성을 변화시키는 방식에 중요한 요소라는 점을 고려하면, 이 연구의 결과는 칼슘의 잘못된 관리와 산화 스트레스를 구별하기 위한 것이 아니라 오히려 다음을 설명하기 위한 것입니다. 칼슘의 잘못된 관리는 이전에 관찰된 산화 스트레스 반응에 기여할 수 있습니다. 이 작업은 또한 특정 분자 또는 이온 기여자를 확실하게 정의하기 위한 전기 분광법의 선택성으로 인해 제한됩니다. 세포 모델 내부 이온 관리의 복잡성으로 인해 치료는 세포 내 Ca{3}} 농도를 변경하기 위한 것이지만 다른 이온이나 분자의 효과도 전기 신호에서 관찰된 변화에 기여할 수 있습니다. 이온 감지 선택성의 이러한 제한은 고주파수의 수용액에서 보고되었습니다[39,40]. 전기적 측정은 광범위하게 비특이적이며 산화성 질환은 근육 세포에 복잡하고 다면적인 영향을 미치기 때문에 목표는 이러한 효과가 전기적으로 어떻게 나타나는지에 대한 이해를 넓히는 것입니다. 이오노마이신 치료는 산화 스트레스를 유발하지 않고 세포 내부의 이온 농도를 변경하는 것으로 알려져 있으므로, 이 연구를 통해 우리는 세포 임피던스에서 칼슘 불균형의 징후에 집중할 수 있습니다. 또한 이 연구는 골격근에 초점을 맞추고 있지만 뉴런의 휴식과 Ca{7}} 농도의 변화를 모니터링할 수 있는 가능성은 더 많은 질병에 영향을 미칩니다[41,42]. 일반적으로 생체 내 Ca2+ 측정은 세포질 Ca2+ 또는 Mag-Fluo-4를 관찰하기 위해 이 연구에서 Fura-2와 같은 형광 물질을 포함하는 것에 의존합니다. 소포체에서 Ca2+를 살펴보는 것입니다[20,43]. 그러나 이러한 옵션에는 세포 라벨링과 복잡한 처리 과정이 필요하며, 둘 다 전기 측정에서는 피할 수 있습니다. 제시된 전기 시스템은 여러 주파수에서 개별 셀 유전체 특성에 대한 더 넓은 시각을 제공하고, 더 빠른 측정과 더 적은 리소스를 필요로 합니다. 질병 진단 또는 모니터링 응용 분야를 위해 세포질 Ca2+의 생물학적 수준에 대한 현실적인 민감도를 입증할 필요가 있으며, 이는 향후 우리의 접근 방식을 형성할 것입니다. 앞으로 이 연구에서 볼 수 있는 스펙트럼 변화는 ME/CFS 임상 샘플에 대한 추가 연구에 사용되어 다양한 주파수의 골격근 전기적 특성이 생물학적 변화와 어떻게 연관될 수 있는지 알아보고 이 희귀 질병에 대한 이해를 높일 것입니다.
5. 결론
전기 측정 및 해당 추출 매개변수를 기반으로 형광 이미지 기반 세포질 Ca2+ 수준과 상호 연관될 수 있는 MHz 및 GHz 스펙트럼 패턴에 미묘한 변화가 있습니다. 전기적으로 측정된 차이는 세포질 유전율(εc) 및 전도도(σc)의 유전 매개변수에 대한 변경으로 추가로 설명할 수 있습니다. 본 연구에서는 세포질 Ca2+ 농도의 증가가 세포질 전도도의 상당한 증가 및 세포질 유전율의 감소와 연관될 수 있음을 발견했습니다. 이 모니터링 시스템은 세포내 상태와 세포질 내 이온 연구에 대한 정보의 깊이를 향상시킵니다. 여기에 제시된 작업은 특정 이온에 대한 측정 시스템의 실제 농도 상관 관계 및 선택적 감지와의 비교가 부족하여 제한됩니다. 따라서 질병 모니터링을 위한 진정한 시스템을 개발하려면 추가 조사가 필요합니다. 즉, 이러한 Ca2+ 수준을 이해하면 골격근 질환 진행 및 치료 효과를 이해하고 평가하는 데 도움이 될 수 있습니다. 또한 사전 평가된 산화 변화의 맥락에서 이러한 변화를 모델링함으로써 ME/CFS와 관련된 다양한 특성이 전체 전기 프로필에 어떻게 기여하는지에 대해 중요한 추론을 할 수 있어 독특하고 신속한 진단 도구로 나아갈 수 있습니다.
저자 기여:개념화, CAF, TP 및 XC; 방법론, CAF, MF, TP 및 XC; 소프트웨어, CAF; 검증, CAF, MF, TP 및 XC; 공식 분석, CAF; 조사, CAF, CS, LM, TP 및 XC; 자원, TP 및 XC; 데이터 큐레이션, CAF, CS, LM 및 TP; 작문 - 원본 초안 준비, CAF; 쓰기 - 검토 및 편집, MF, TP 및 XC; 시각화, CAF; 감독, MF, TP 및 XC; 프로젝트 관리, TP 및 XC; 자금 조달, TP 및 XC 모든 저자는 출판된 원고 버전을 읽고 동의했습니다.
자금:CAF와 XC는 국립과학재단(National Science Foundation) 전기, 통신 및 사이버 시스템 보조금 1809623 부문의 자금 지원을 통해 지원을 받았습니다. CS, LM 및 TP는 "G. d'Annunzio" 대학 보조금을 통해 지원됩니다.
기관 검토 위원회 성명:해당되지 않습니다.
사전 동의서:해당되지 않습니다.
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이해 상충:저자는 이해 상충을 선언하지 않습니다.
참고자료
1. 베카피코, S.; 푸글리엘리, C.; 피에트란젤로, T.; 벨로모, R.; 파노, G.; Fuller, S. 인간 위성 세포의 기능적 측면에 대한 연령 의존적 영향. 앤. 뉴욕 아카데미. 과학. 2007, 1100, 345-352. [상호참조]
2. 브라보-사구아, R.; 파라, V.; 무뇨스-코르도바, F.; 산체스-아길레라, P.; 가리도, V.; 콘트레라스-페라, A.; 치옹, M.; Lavandero, S. 5장 - 근육 세포의 근형질 세망 및 칼슘 신호 전달: 항상성과 질병. 세포 및 분자 생물학의 국제 검토에서; Kepp, O., Galluzzi, L., Eds.; 소포체의 생물학; 학술 출판물: 미국 매사추세츠주 케임브리지, 2020; 350권, 197~264페이지.
3. 프로타시, F.; 피에트란젤로, L.; Boncompagni, S. 칼슘 진입 단위(CEU): 골격근 기능 및 질병의 관점. J. 머슬 레스. 셀모틸. 2021, 42, 233–249. [상호참조] [PubMed]
4. 에스피노사, A.; Henríquez-Olguín, C.; Jaimovich, E. 골격근의 반응성 산소 종 및 칼슘 신호: 정상적인 신호 및 질병 모두에 관련된 누화. 세포 칼슘 2016, 60, 172-179. [상호참조]
5. 아그라왈, A.; 수리야쿠마르, G.; Rathor, R. 골격근 약화 시 Ca{1}} 신호 전달 결함의 역할: 약리학적 의미. 제이셀커뮤니티. 신호. 2018, 12, 645-659. [상호참조] [PubMed]
6. 거윈, M.; Maes, M. 근육통성 뇌척수염/만성 피로 증후군(ME/CFS) 환자의 근육 피로 및 근육통을 설명하는 메커니즘: 최근 연구 결과 검토. 현재 류마톨. 2017, 19, 1. [상호참조]
7. Dargelos, E.; 브륄레, C.; 콤바레, L.; 하지-사시, A.; 듀롱, S.; 푸사드, S.; Cottin, P. 골격근 노화에 대한 칼슘 의존성 단백질 분해 시스템의 관련. 특급. 게론톨. 2007, 42, 1088-1098. [상호참조] [PubMed]
8. 레이젠데커, WJ; 파사퀸, A.-C.; 메칭거, L.; Rüegg, UT 스트레스 조건 하에서 Mdx 마우스의 골격근 세포에서 세포질 칼슘의 조절. 브르. J. Pharmacol. 1996, 118, 611-616. [상호참조]
9. 버치톨드, MW; 브링크마이어, H.; Müntener, M. 골격근의 칼슘 이온: 근육 기능, 가소성 및 질병에 대한 중요한 역할. 물리. 개정판 2000, 80, 1215-1265. [상호참조]
10. 탕, W.; 탕, D.; 니, Z.; 시앙, N.; Yi, H. 유체역학적 트래핑과 광대역 임피던스 분광학을 통합한 휴대용 단일 세포 분석 시스템. 과학. 중국기술. 과학. 2017, 60, 1707-1715. [상호참조]
11. 바오, X.; 오켓, I.; 바오, J.; 도이젠, J.; 정, J.; 길, D.; 리우, Z.; 푸어스, B.; Schreurs, D.; Nauwelaers, B. 세포 배양의 광대역 유전체 분광학. IEEE 트랜스. 마이크로. 이론 기술. 2018, 66, 5750-5759. [상호참조]
12. 닝, Y.; 물타리, C.; 루오, X.; 팔레고, C.; 쳉, X.; 황제이CM; 덴지, A.; 멀라, C.; 아폴로니오, F.; Liberti, M. 개별 생물학적 세포의 광대역 전기 감지. IEEE 트랜스. 마이크로. 이론 기술. 2014, 62, 1905-1911. [상호참조]
13. 그레니어, K.; 탐라, A.; 제덱, A.; Poiroux, G.; 아티스, F.; 첸, T.; 첸, W.; 푸폿, M.; Fournie, J.-J.; Dubuc, D. 마이크로파 유전체 분광법을 사용한 저용량 및 무표지 분자 특성화 및 세포 모니터링. 2018년 6월 14~15일 미국 펜실베이니아주 필라델피아에서 열린 2018 IEEE 국제 마이크로파 생물의학 컨퍼런스(IMBioC) 간행물 IEEE: 피스카타웨이, 뉴저지, 미국, 2018; 82~84쪽.
14. 포스터, KR; Schwan, 조직 및 생물학적 재료의 HP 유전 특성: 비판적 검토. 치명타 바이오메드 목사. 영어 1989, 17, 25–104.
15. 마크스, GH; Davey, CL 무선 주파수에서 생물학적 세포의 유전 특성: 생명공학 응용. 효소. 미생물. 기술. 1999, 25, 161-171. [상호참조]
16. 나시르, N.; Al Ahmad, M. Cells 전기적 특성: 유전 특성, 혼합물 및 모델링 이론. J.Eng. 2020, 2020, 9475490. [상호참조]
17. 그레니어, K.; 듀벅, D.; 첸, T.; 아티스, F.; 크레티엔노트, T.; 푸폿, M.; 포니, J.-J. 암 조사를 위한 세포 수준의 마이크로파 기반 유전체 분광학의 최근 발전. IEEE 트랜스. 마이크로. 이론 기술. 2013, 61, 2023~2030. [상호참조]
18. ATCC. L6—CRL-1458. 온라인 이용 가능: https://www.atcc.org/products/crl-1458(2022년 10월 24일 액세스)
19. 피오레티, B.; 피에트란젤로, T.; Catacuzzeno, L.; Franciolini, F. 중간 전도도 Ca2+-활성화된 K+ 채널은 C2C12 근모세포에서 발현되며 근생성 동안 하향조절됩니다. 오전. J. Physiol. 세포물리학. 2005, 289, C89–C96. [상호참조] [PubMed]
20. 피에트란젤로, T.; 매사추세츠주 마리지오; 로렌존, P.; 풀러, S.; 프로타시, F.; 래스본, M.; Werstiuk, E.; Fanò, G. C2C12 마우스 골격근 세포의 특정 GTP 결합 부위의 특성화. J. 머슬 레스. 셀모틸. 2002, 23, 107-118. [상호참조] [PubMed]
21. 퍼거슨, C.; 피니, N.; 두, X.; 파리나, M.; 황제이엠씨; 피에트란젤로, T.; Cheng, X. 단일 L6 골격근 세포에서 산화 스트레스의 새로운 특성으로서의 광대역 전기 임피던스. 항문. 침. Acta 2021, 1173, 338678. [CrossRef] [PubMed]
22. Du, X.; 퍼거슨, C.; 마, X.; 쳉, X.; Hwang, JCM 살아있는 세포 내 핵의 초광대역 임피던스 분광학. IEEE J. Electromagn. RF 마이크로. 메드. Biol. 2021, 6, 267–272. [상호참조]
23. Du, X.; Ladegard, C.; 마, X.; 쳉, X.; Hwang, JCM 900Hz에서 40GHz까지 살아있는 세포에서 핵 크기의 광대역 전기 감지. 2020 IEEE MTT-S 국제 마이크로파 생물의학 컨퍼런스(IMBioC) 간행물, 프랑스 툴루즈, 2020년 12월 14~17일; 1~4페이지.
24. Caspers, F. RF 엔지니어링 기본 개념: S-파라미터. arXiv 2012, arXiv:1201.2346v1.
25. Kidokoro, Y. 쥐 골격근 세포주에서 막 전기적 특성의 발달 변화. J. Physiol. 1975, 244, 129-143. [상호참조] [PubMed]
26. 마, X.; 두, X.; 멀티리, CR; 닝, Y.; 루오, X.; 골리자데, V.; 팔레고, C.; 쳉, X.; Hwang, JCM 생물학적 세포의 세포질 용량에 대한 재현 가능한 광대역 측정. 2016 IEEE MTT-S 국제 마이크로파 심포지엄(IMS) 간행물, 미국 캘리포니아주 샌프란시스코, 2016년 5월 22~27일 IEEE: 피스카타웨이, 뉴저지, 미국, 2016; 1~4페이지.
27. 에르달, WL; 채프먼, CJ; 테일러, RW; Pfeiffer, 잘 정의된 모델 시스템에서 Ionophores A23187, Ionomycin 및 4-BrA23187의 DR Ca2+ 수송 특성. 생물 물리학. J. 1994, 66, 1678-1693. [상호참조]
28. 카리다, D.; 요릭, D.; 카베자스, M.; 울프, L.; 허드슨, TH; Dow, GS 메플로퀸에 의해 유발된 포유류 세포의 칼슘 항상성 파괴는 이오노마이신에 의해 유발된 것과 유사합니다. 항균제. 요원 Chemother. 2008, 52, 684-693. [상호참조] [PubMed]
29. 소저, EB; Vernier, PT 장 반전에 의한 2ns 전기 자극에 대한 생물학적 반응의 변조. 비오킴. 생물 물리학. Acta(BBA) - Biomembr. 2019, 1861, 1228-1239. [상호참조]
30. 온타리오 주 파코모바; 그레고리, B.; Semenov, I.; Pakhomov, AG 나노전기천공법에 따른 칼슘 매개 기공 확장 및 세포 사멸. 비오킴. 생물 물리학. Acta 2014, 1838, 2547-2554. [상호참조] [PubMed]
31. 버크, RC; 바르데, 에스엠; 카, L.; 로마넨코, S.; 아르노-코르모스, D.; 레베크, P.; O'Connor, RP 나노초 펄스 전기장은 U87 교모세포종 세포의 전압 개폐 K+, Ca{4}} 및 TRPM8 채널을 통해 막횡단 전위를 탈분극합니다. 비오킴. 생물 물리학. Acta Biomembr. 2017, 1859, 2040~2050. [상호참조]
32. 장, J.; 블랙모어, PF; 하그레이브, 바이; 샤오, S.; 비비, SJ; Schoenbach, KH 나노초 펄스 전기장(나노펄스): 혈소판 활성화를 위한 새로운 비리간드 작용제. 아치. 생화학. 생물 물리학. 2008, 471, 240-248. [상호참조]
33. 켈러, C.; 헬스텐, Y.; 스타인버그, A.; Klarlund Pedersen, B. 인간 골격근 세포에서 칼시뉴린을 통한 IL-6 및 TNF-의 차별적 조절. 사이토카인 2006, 36, 141-147. [상호참조] [PubMed]
34. 홈즈, AG; 와트, MJ; 캐리, 앨라배마; Febbraio, MA 이오노마이신은 에피네프린의 생리학적 용량은 아니지만 골격근 인터루킨-6 mRNA 발현과 단백질 방출을 자극합니다. 대사 2004, 53, 1492-1495. [상호참조]
35. 황, H.; 자오, Y.; 샹, X.; 렌, H.; 자오, Y.; Liu, X. 골격근의 CAIII 발현은 Ca2+–CaMKII– MEF2C 신호에 의해 조절됩니다. 특급. 세포 해상도 2019, 385, 111672. [상호참조]
36. 루파, D.; 우, FS; Martonosi, AN 배양된 골격근에서 단백질 합성에 대한 Ca{1}} 이온 운반체의 효과. 비오킴. 생물 물리학. 액타(BBA) - Gen. 제목 1981, 674, 225-237. [상호참조]
37. 피에트란젤로, T.; 디 필리포, ES; 만시넬리, R.; 도리아, C.; 로티니, A.; Fanò-Illic, G.; Fuller, S. 저강도 운동 훈련은 골격근 재생 가능성을 향상시킵니다. 앞쪽. 물리. 2015, 6, 399. [CrossRef] [PubMed]
38. Petchakup, C.; 테이, HM; 리, KHH; Hou, HW 통합 관성 임피던스 세포 계측법은 신속한 라벨 없는 백혈구 분리 및 호중구 세포외 트랩(NET) 프로파일링을 위한 것입니다. 랩 칩 2019, 19, 1736-1746. [상호참조]
39. 펑크너, S.; 니휴스, G.; 슈미트, DA; 헤이든, M.; 슈왑, G.; 칼라한, KM; 토비아스, DJ; Havenith, M. 염 수용액의 저주파 운동 관찰: 수화 이온의 테라헤르츠 진동 특성. J.Am. 화학. Soc. 2012, 134, 1030-1035. [상호참조] [PubMed]
40. 발로스, V.; 칼리안난, NK; 엘가바티, H.; 울프, M.; 퀴네, TD; Sajadi, M. 시간 분해 테라헤르츠-라만 분광학은 양이온과 음이온이 물의 분자간 상호 작용을 뚜렷하게 수정한다는 사실을 보여줍니다. Nat. 화학. 2022, 14, 1031–1037. [상호참조]
41. 글라이히만, M.; Mattson, MP 신경 칼슘 항상성 및 조절 장애. 항산화. 산화 환원 신호. 2011, 14, 1261-1273. [상호참조] [PubMed]
42. 브리니, M.; 칼리, T.; 오톨리니, D.; Carafoli, E. 신경 칼슘 신호 전달: 기능 및 기능 장애. 셀. 몰. 생명 과학. 2014, 71, 2787-2814. [상호참조]
43. AF 밀란; 린콘, 오아시스; 아랑고, LB; 로이토비치, AA; 스미스, GL; 매사추세츠주 히랄도; 부압달라, F.; Calderón, Fast Ca2+ Dye Mag-Fluo-4로 기록된 포유류 골격근 Ca2+ 과도 현상의 JC 교정. 비오킴. 생물 물리학. 액타(BBA) - Gen. 제목 2021, 1865, 129939. [상호참조]
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