폐경 전후 증후군 동물 모델 III에 대한 페닐에틸 알코올 글리코시드신 시스탄체의 개입 연구 Ⅲ

실험 2

의 효과시스탄체 페닐에탄올 배당체마우스로폐경전후의모델 재료 및 방법

실험재료

1.1 실험동물

SPF 등급 마우스, 쿤밍종, 암컷, 20-25g, 우한 생물학 제품 연구소에서 제공. 인증서 번호: 42000400000611; 실험실 인증서 번호 SYXK (Yu) 2010-001. 1.2 실험용 의약품

실험 1의 방법에 따라 시스탄체 데데티콜라 페닐에탄올 배당체를 제조하였으며, 그 함량은 66.47%에 이르렀다. Gengnian'an Capsule, 성분: 지황, 지황, 알리스마, Ophiopogon japonicus, 사시나무과, 작약 껍질, 복령, 자개, 쿠르쿨리고, 오미자, 자철석, 다종덩굴, 운카리아, 부유밀, 다종다종 . 효능 및 효능 : 음(陰)에 영양을 공급하고 양(陽)을 억제하며, 괴로움을 완화하고 마음을 안정시킨다. 갱년기의 안면 홍조와 발한, 현기증, 이명, 과민성 및 불면증에 사용됩니다. 사양: 캡슐당 0.3g. 사용법 및 복용량: 경구, 1회 3캡슐, 1일 3회. 제조업체: Shanxi Tianxing Pharmaceutical Co., Ltd. 생산 배치 번호: 121104. 승인 번호: 국가 의약품 승인 번호 Z14021848.

대두 이소플라본 및 비타민 E 연질 캡슐, 성분 목록: 대두 이소플라본 분말, 비타민 E, 해바라기유, 젤라틴, 글리세린, 물, 타르트라진, 이산화티탄. 아이코닉 성분 및 함량: 100g당 55.2mg의 대두 이소플라본(제니스테인으로 계산)과 608.5mg의 비타민 E가 함유되어 있습니다. 건강 기능: 골밀도를 증가시킵니다. 섭취방법 및 복용량: 1일 2회, 1캡슐을 따뜻한 물과 함께 섭취하세요. 사양: 500mg×100캡슐. 제조업체: Weihai Ziguang Biotechnology Development Co., Ltd. 생산 배치 번호: 13070302. 승인 번호: National Food Health G20080032.

결과 1 마우스 폐경기 모델의 자율적 활동에 미치는 영향

각 실험군에서 마우스의 자율활동 테스트 결과를 표 2 및 도 2에 나타내었다.

1.3 실험 시약

카르복시메틸셀룰로오스나트륨, Tianjin Hengxing Chemical Reagent Manufacturing Co., Ltd., 배치 번호: 20120418; 주사용 페니실린 나트륨, North China Pharmaceutical Co., Ltd., 사양: 400만개, 생산 배치 번호: c1206807; 포름알데히드 용액(분석 등급), Yantai City Shuangshuang Chemical Co., Ltd., 생산 배치 번호: 20130902; 0.9% 염화나트륨 주사제(Chenxin Pharmaceutical Co., Ltd.); 사양: 250ml, 생산 배치 번호: 1301265303;

클로랄 수화물, Tianjin Guangfu Fine Chemical Research Institute, 배치 번호 20120827; 마우스 E2 ELISA 검출 키트, R&D Company, 배치 번호: 20131001A; 마우스 T ELISA 검출 키트, R&D Company, 배치 번호: 20131001A; 마우스 LH ELISA 검출 테스트 키트, R&D Company, 배치 번호: 20131001A;

마우스 FSH ELISA 검출 키트, R&D Company, 배치 번호: 20131001A. 1.4 실험 장비

전자 저울, Shanghai Minqiao Medical Instrument Co., Ltd., 모델: JY601; 전자 분석 저울, Ohaus (Shanghai) Company, 모델: AR1140/C; 고속 데스크탑 원심분리기, Shanghai Anting Scientific Instrument Factory, 모델: TGL-168; 전기 온도 조절 수조, Shanghai Yiheng Scientific Instrument Co., Ltd., 모델: HWS12; 마우스 자율 활동 테스터, Chengdu Taimeng Technology Co., Ltd., 모델: ZZ-6; 마우스 어둠 회피 측정기, Chengdu Taimeng Technology Co., Ltd., 모델: BA-200; 고속 냉동 원심분리기, HKUST Innovation Co., Ltd. Zhongjia 지점, 모델: KDC-160HR; 조정 가능한 피펫, Shanghai Leibo Analytical Instrument Co., Ltd.;

마이크로플레이트 판독기, American BIO-RAD Company, 모델: 680;

전기현미경, 일본 OLYMPUS사, 모델: BX61

CISTANCHE가 작동하는 데 얼마나 걸리나요?

2 실험방법

2.1 모델링 및 약물 투여

모델링 방법: 체중이 23-25g인 암컷 Kunming 쥐 1마리00마리를 취하고, 무작위로 12마리를 공백 그룹으로 선택하여 가짜 수술을 수행하고, 나머지 쥐는 폐경기 모델을 만드는 데 사용됩니다. . 체중을 측정한 후 10% 염소수화물(0.03ml/10g)을 복강내 주사하여 마우스를 마취시킨 후 복부 자세로 고정시켰다. 그 후, 마우스의 뒷쪽 액와선이 교차하는 마지막 갈비뼈 아래와 척추 바깥쪽 약 1cm 정도의 털을 잘라낸 후 소독하고 잘랐다. 피부와 등 근육이 0.5-1cm 정도 열리고 절개 부위에 유백색의 반짝이는 지방덩어리가 보이고 그 안에 난소가 박혀있습니다. 작은 핀셋을 사용하여 살살 지방덩어리를 잡고 절개 부위 밖으로 빼낸 후 지방덩어리를 분리하면 가늘고 불규칙한 황적색의 난소군이 보입니다. 절단 시 먼저 난소 아래의 나팔관(지방 포함)을 얇은 실로 결찰한 후 난소를 제거합니다. 수술 후 자궁각을 다시 복강에 삽입하고 근육과 피부를 봉합하고 양쪽 난소도 같은 방법으로 제거합니다. 수술 후 동물을 조심스럽게 사육하고 감염 예방을 위해 페니실린 200000 u/kg(각 0.1 mL)을 3일 연속 1일 1회 근육주사하였다. 난소가 완전히 제거되었는지 여부를 확인하기 위해 수술 후 5일 동안 각 마우스에 대해 질 도말 검사를 5일 연속 하루에 한 번씩 실시했습니다. 도말검사에서 발정반응을 보인 생쥐는 폐기하였고, 완전히 거세된 72마리의 생쥐를 무작위로 균일하게 실험 목적을 위해 6개의 그룹, 즉 모델군으로 나누었다.Gengniang'an 캡슐 그룹, 대두이소플라본 연질캡슐군, 대군 등이 있습니다. , 중간 및 작은 용량의시스탄체 페닐에탄올 배당체그룹. 제조방법 : {{0}}.5% CMC 제조방법 : 카르복시메틸셀룰로오스나트륨 4g을 달아 증류수와 혼합하여 800ml로 한다. 시스탄체 페닐에탄올 배당체군은 대용량, 중용량, 소량의 투여량이 각각 20{{30}}mg/kg, 100mg/kg, 50mg/kg이었다(투여량 0.1ml/ 10g). 제조방법 : 시스탄체 페닐에타노이드 배당체 2000mg, 1000mg, 500mg을 각각 달아 0.5% CMC 소량을 넣어 녹인 후 100ml로 조절하여 잘 섞으면 끝이다. 경련안캡슐(675mg/kg, 증류수와 67.5mg/ml, 0.1ml/10g 혼합, 임상 용량의 15배에 해당); 조제방법: 경년안캡슐 9개를 취하여 먼저 0.5% CMC 디졸브를 소량 사용하고 40ml로 조절하여 잘 섞어서 경년안캡슐 현탁액(675mg/kg)을 얻습니다. 대두이소플라본 비타민E 연질캡슐(250mg/kg, 증류수를 사용하여 25mg/ml, 0.1ml/10g, 임상용량의 15배에 해당); 제조방법: 대두이소플라본캡슐 2개를 취하여 먼저 0.5%CMC를 소량 취하여 40ml로 조절하고 잘 섞어서 대두이소플라본캡슐 현탁액(250mg/kg)을 얻습니다.

보관방법 : 냉장보관, 사용 중에는 따뜻하게 보관하세요.

투여방법: 각 군의 동물에게 수술 후 10일째에 상응하는 약물을 투여하였다. 경련안캡슐군에는 경련안캡슐현탁액 675mg·kg-1을 경구투여하였고, 대두이소플라본 연질캡슐군에는 대두이소플라본 연질캡슐현탁액 250mg·kg-1을 경구투여하였고, 대형, 중형 및소량의 시스탄체 벤젠관리되었다. 에탄올배당체군에는 Cistanche phenylethanoid 배당체 200mg·kg-1, 10mg·kg-1, 50mg·kg{을 대, 중, 소용량 경구투여하였다. {5}}, 각각 0.1ml/10g. 블랭크 그룹과 모델 그룹에는 동일한 용량의 0.5% CMC 용액을 21일 동안 하루에 한 번 위관 영양 공급했습니다.

마우스 FSH ELISA 검출 키트, R&D Company, 배치 번호: 20131001A. 1.4 실험 장비

전자 저울, Shanghai Minqiao Medical Instrument Co., Ltd., 모델: JY601; 전자 분석 저울, Ohaus (Shanghai) Company, 모델: AR1140/C; 고속 데스크탑 원심분리기, Shanghai Anting Scientific Instrument Factory, 모델: TGL-168 ; 전기 온도 조절 수조, Shanghai Yiheng Scientific Instrument Co., Ltd., 모델: HWS12; 마우스 자율 활동 테스터, Chengdu Taimeng Technology Co., Ltd., 모델: ZZ-6; 마우스 암회피 측정기, Chengdu Taimeng Technology Co., Ltd., 모델: BA-200; 고속 냉동 원심분리기, HKUST Innovation Co., Ltd. Zhongjia 지점, 모델: KDC-160HR; 조정 가능한 피펫, Shanghai Leibo Analytical Instrument Co., Ltd.;

마이크로플레이트 판독기, American BIO-RAD Company, 모델: 680;

전기현미경, 일본 OLYMPUS사, 모델: BX61

2 실험방법

2.1 모델링 및 약물 투여

모델링 방법: 체중이 23-25g인 암컷 Kunming 쥐 1마리00마리를 취하고, 무작위로 12마리를 공백 그룹으로 선택하여 가짜 수술을 수행하고, 나머지 쥐는 폐경기 모델을 만드는 데 사용됩니다. . 체중을 측정한 후 10% 염소수화물(0.03ml/10g)을 복강내 주사하여 마우스를 마취시킨 후 복부 자세로 고정시켰다. 그 후, 마우스의 뒷쪽 액와선이 교차하는 마지막 갈비뼈 아래와 척추 바깥쪽 약 1cm 정도의 털을 잘라낸 후 소독하고 잘랐다. 피부와 등 근육이 0.5-1cm 정도 열리고 절개 부위에 유백색의 반짝이는 지방덩어리가 보이고 그 안에 난소가 박혀있습니다. 작은 핀셋을 사용하여 살살 지방덩어리를 잡고 절개 부위 밖으로 빼낸 후 지방덩어리를 분리하면 가늘고 불규칙한 황적색의 난소군이 보입니다. 절단 시 먼저 난소 아래의 나팔관(지방 포함)을 얇은 실로 결찰한 후 난소를 제거합니다. 수술 후 자궁각을 다시 복강에 삽입하고 근육과 피부를 봉합하고 양쪽 난소도 같은 방법으로 제거합니다. 수술 후 동물을 조심스럽게 사육하고 감염 예방을 위해 페니실린 200000 u/kg(각 0.1 mL)을 3일 연속 1일 1회 근육주사하였다. 난소가 완전히 제거되었는지 여부를 확인하기 위해 수술 후 5일 동안 각 마우스에 대해 질 도말 검사를 5일 연속 하루에 한 번씩 실시했습니다. 도말검사에서 발정반응을 보인 생쥐는 폐기하고, 완전히 거세된 72마리의 생쥐를 무작위로 균등하게 실험 목적을 위해 모델군, 경량안캡슐군, 대두이소플라본 연질캡슐군, 대두군 등 6개 군으로 나누었다. , 중간 및 작은 용량의시스탄체 페닐에탄올 배당체그룹. 제조방법 : 0.5% CMC 제조방법 : 카르복시메틸셀룰로오스나트륨 4g을 달아 증류수와 혼합하여 800ml로 한다. 대용량, 중간 용량, 소량 용량의 복용량시스탄체 페닐에탄올 배당체그룹은 각각 200mg/kg, 10{{20}}mg/kg 및 50mg/kg(투여량)이었습니다. 0.1ml/10g). 제조방법 : 시스탄체 페닐에타노이드 배당체 2000mg, 1000mg, 500mg을 각각 달아 0.5% CMC 소량을 넣어 녹인 후 100ml로 조절하여 잘 섞으면 끝이다. 경련안캡슐(675mg/kg, 증류수와 67.5mg/ml, 0.1ml/10g 혼합, 임상 용량의 15배에 해당); 조제방법: 경년안캡슐 9개를 취하여 먼저 0.5% CMC 디졸브를 소량 사용하고 40ml로 조절하여 잘 섞어서 경년안캡슐 현탁액(675mg/kg)을 얻습니다. 대두이소플라본 비타민E 연질캡슐(250mg/kg, 증류수를 사용하여 25mg/ml, 0.1ml/10g, 임상용량의 15배에 해당); 제조방법: 대두이소플라본캡슐 2개를 취하여 먼저 0.5%CMC를 소량 취하여 40ml로 조절하고 잘 섞어서 대두이소플라본캡슐 현탁액(250mg/kg)을 얻습니다.

보관방법 : 냉장보관, 사용 중에는 따뜻하게 보관하세요.

투여 방법: 각 그룹의 동물에게 수술 후 10일에 해당 약물을 투여했습니다. 경련안캡슐군에는 경련안캡슐현탁액 675mg·kg-1을 경구투여하였고, 대두이소플라본 연질캡슐군에는 대두이소플라본 250mg·kg-1을 경구투여하였다. 연질 캡슐 현탁액과 대, 중, 소용량의 시스탄체 벤젠을 투여했습니다. 에탄올배당체군에는 Cistanche phenylethanoid 배당체 200mg·kg-1, 10mg·kg-1, 50mg·kg-1, 0.1ml/10g을 대, 중, 소용량으로 경구투여하였다. 블랭크 그룹과 모델 그룹에는 동일한 용량의 0.5% CMC 용액을 21일 동안 하루에 한 번 위관 영양 공급했습니다.

2.2 관찰 항목 및 탐지 방법

투여 18일째에 각 그룹의 생쥐가 5분 이내에 자발적으로 활동하는 횟수를 측정하였다. 처음 암실에 입장한 쥐의 잠복기 및 암실 입장 후 5분 이내에 전기 충격을 받은 횟수를 투여 19일부터 20일까지 측정하였다. 마지막 투여 2시간 후(음식이나 물 없이 12시간), 마우스의 체중을 측정하고 안구를 적출한 후 혈액을 채취하여 혈청을 분리하고 혈청 내 E2, T, LH, FSH의 함량을 측정하였다. 정확히 잰; 그런 다음 마우스를 경추 탈구로 희생시키고 해부했습니다. , 흉선, 비장 및 자궁 조직을 제거하고 습윤 중량을 측정하고 장기 지수(장기 지수=장기 습윤 중량 mg/마우스 중량 g)를 계산한 다음 뇌하수체를 제거합니다. 흉선, 비장, 자궁, 뇌하수체를 10% 포르말린 용액에 고정하고 파라핀에 포매한 후 절개하고 HE 염색한 후 광학현미경으로 각 군의 조직 형태학적 변화를 관찰하였다.

2.2.1 독립적인 활동 수에 대한 테스트

각 그룹의 생쥐를 자발적 활동 장치에 넣고 1분간 환경에 먼저 적응시킨 후 5분 이내의 자발적 활동 횟수를 측정하였다.

2.2.2 암흑회피 시험

각 그룹의 쥐를 꼬리가 암실의 작은 구멍을 향하게 하여 테스트 상자에 넣고 훈련을 실시합니다. 24시간 후 처음으로 암실에 입장한 쥐의 잠복기 및 암실에 입장 후 5분 이내에 전기 충격을 받은 횟수를 다시 측정하였다.

2.2.3 키트 결정 방법

혈청 검체 확보: 발열원과 내독소가 없는 시험관을 사용하십시오. 수술 중 세포 자극을 피하십시오. 혈액을 채취한 후 3000 rpm으로 10분간 원심분리하여 빠르고 조심스럽게 혈청과 적혈구를 분리합니다. 마우스 에스트라디올(E2) ELISA 검출 키트 분석 방법: 상온에서 20분간 평형을 유지한 알루미늄 호일 백에서 필요한 스트립을 꺼내고, 나머지 스트립은 자동 밀봉 백에 밀봉한 후 4도에 돌려보냅니다. . 표준 웰과 샘플 웰을 설정하고 각 표준 웰에 다양한 농도의 표준 50μL을 추가합니다. 먼저, 테스트할 샘플 10 μL를 샘플 웰에 넣은 다음 샘플 희석액 40 μL를 추가합니다(즉, 샘플을 5배로 희석합니다). 빈칸에 추가하지 마세요. 블랭크 웰을 제외하고 표준 웰의 각 웰에 고추냉이 퍼옥시다제 표지 검출 항체 100 μL를 첨가하고 샘플 웰을 채취한 후 밀봉 필름으로 반응을 잘 밀봉합니다. 37도 수조나 인큐베이터에서 60분 동안 배양합니다. 액체를 버리고 흡수성 종이 위에서 가볍게 두드려 건조시킨 후 각 웰에 세척액을 채우고 1분간 방치합니다. 세척액을 털어내고 흡수성 종이 위에 두드려 건조시킨 후 접시 세척을 5회 반복합니다. 먼저 각 웰에 기질 A와 B를 각각 50μL씩 첨가하고, 37도 암실에서 15분간 배양합니다. 효소 플레이트를 꺼내 각 웰에 정지용액 50 μL를 첨가한 후 15분 이내에 450 nm 파장에서 각 웰의 흡광도 값(OD 값)을 측정합니다. 표준품의 농도와 해당 OD 값에 따라 표준품 회귀 곡선을 그리고 곡선 방정식에 따라 각 시료의 농도 값을 계산합니다. 최종 농도는 실제 측정 농도에 희석 인자를 곱한 값입니다. 그 중 표준품(S0-S5)의 농도는 0, 4, 8, 16, 32, 64 pmol/L입니다. 마우스(Mouse) 테스토스테론(T) ELISA 검출 키트 표준(S0-55)의 농도는 0, 50, 100, 200, 400 및 800pg/mL이며;

마우스(Mouse) 황체형성호르몬(LH) ELISA 검출키트 표준물질(S{{0}})의 농도는 0, 0.5, 1, 2, 4, 8mIU/mL;

마우스(Mouse) 난포자극호르몬(FSH) ELISA 검출키트 표준품(S0-55)의 농도는 0, 5, 10, 20, 40, 80mIU/mL 입니다.

2.3 통계처리 방법

데이터 분석을 위해 데이터의 통계처리를 위해 SPSS17.0 의료통계패키지를 사용하였다. 측정 데이터는 평균±표준편차(-x±s)로 표현하였다. 그룹 간 비교에는 일원 분산 분석이 사용되었습니다. LSD 방법은 분산의 균질성을 테스트하는 데 사용되었습니다. , 균등하지 않은 분산에는 Games-Howell 테스트를 사용하고 성적 데이터에는 Ridit 테스트를 사용했습니다.

그림 3 마우스 폐경기 모델에서 암회피 실험의 잠복기에 Cistanche 페닐에탄올 글리코사이드가 미치는 영향

그림 4 폐경전후 마우스 모델의 암회피 실험에서 Cistanche 페닐에탄올 글리코시드가 전기 충격 횟수에 미치는 영향. Table 3과 Figure 3~4를 보면 공백그룹과 비교하여 모델그룹 마우스의 잠복기 및 전기충격 횟수가 현저히 감소한 것을 알 수 있다( P<0.01), reflecting the decline in memory in the mouse perimenopausal model. Compared with the model group, Gengnianan, soybean isoflavones, and large and medium doses of Cistanche phenylethanoid glycosides could significantly increase the latency of the dark avoidance test in mice, reduce the number of electric shocks (P<0.01), and improve the memory of mice.

3 마우스 폐경기 모델에서 장기 지수에 미치는 영향

각 실험군의 쥐의 흉선, 비장, 자궁 지수를 표 4와 그림 5에 나타내었다.

표 4 및 도 5에서 알 수 있듯이, 공백군과 비교하여 모델군 마우스의 자궁지수가 유의하게 낮았다(P<0.01), indicating that removal of the ovaries caused uterine atrophy in the perimenopausal model mice, and removal of the ovaries resulted in insufficient estrogen secretion. Causes immune organ atrophy in perimenopausal mice. Compared with the model group, soy isoflavones, Gengnianan, large and medium doses of Cistanche phenylethanol glycoside can significantly improve the thymus, spleen and uterine index (P<0.01), and low dose Cistanche phenylethanol glycoside can significantly improve the perimenopausal model. Mouse uterine index (P<0.05). 4 Effects on serum sex hormone levels in mouse perimenopausal model

각 그룹의 마우스 혈청 내 E2, T, FSH 및 LH의 함량. 표 5~6 및 그림 6~9를 참조하세요. Table 5~6 및 Figure 6~9에서 볼 수 있듯이 공백군과 비교하여 모델군은 마우스 혈청 내 E2와 T의 수준이 유의하게 감소하였다(P<0.01), and the levels of LH and FSH were significantly increased (P<0.01). , indicating that removal of ovaries leads to disorders of sex hormone levels in the serum of perimenopausal model mice and the perimenopausal mouse model was successfully replicated. Compared with the model group, each administration group can significantly reduce the elevated LH level in serum (P<0.01); large and medium doses of Cistanche phenylethanol glycoside, Gengniangan, and soybean isoflavones can significantly increase the levels of perimenopausal mice. E2 and T levels in the serum of the early-stage model (P<0.01) and reduced elevated FSH and LH levels in the serum. Low-dose Cistanche phenylethanol glycoside can significantly increase serum E2 levels and reduce serum FSH levels (P<0.05); low-dose Cistanche phenylethanoid glycoside has a tendency to increase serum T levels.

4 폐경전후 마우스 모델에서 혈청 성호르몬 수치에 미치는 영향

각 그룹의 생쥐 혈청 내 E2, T, FSH 및 LH의 함량. 표 5~6 및 그림 6~9를 참조하세요.

Table 5~6 및 Figure 6~9에서 볼 수 있듯이 공백군과 비교하여 모델군은 마우스 혈청 내 E2와 T의 수준이 유의하게 감소하였다(P<0.01), and the levels of LH and FSH were significantly increased (P< 0.01), indicating that removal of ovaries leads to disorder of sex hormone levels in the serum of perimenopausal model mice, and the perimenopausal mouse model was successfully replicated. Compared with the model group, each administration group can significantly reduce the elevated LH level in serum (P<0.01); large and medium doses of Cistanche deserticola phenylethanol glycoside, Gengniannian, and soybean isoflavones can significantly reduce the level of LH in mice. E2 and T levels in serum of perimenopausal model (P<0.01) and reduced elevated FSH and LH levels in serum. Low-dose Cistanche deserticola phenylethanol glycoside can significantly increase serum E2 levels and reduce serum FSH levels (P<0.05); low-dose Cistanche deserticola phenylethanoid glycoside has a tendency to increase serum T levels. 5. Effects on organ tissue morphology in perimenopausal model mice

각 실험군에 대한 생쥐의 자궁, 흉선, 비장, 뇌하수체의 병리학적 및 조직학적 관찰 결과는 다음과 같다. 폐경기 쥐의 병리학적 사진은 부록 1에 나타내었다.

5.1 폐경기 모델 마우스의 자궁 조직 형태에 미치는 영향

각 실험군에서 생쥐의 자궁내막, 분비샘, 자궁근층의 변화 정도에 따라 반정량적 기준을 사용하여 병리학적 조직 형태를 4가지 수준으로 나누었습니다. 각 실험군의 생쥐의 자궁을 측정하였다. 관찰 결과를 표 7에 나타내었다. 표 7 폐경기 모델 마우스의 자궁 병리학적 변화에 대한 시스탄체 데데티콜라 페닐에탄올 배당체의 효과 단위:단

"-" 자궁내막 상피세포, 분비선, 자궁근층, 장막은 모두 정상입니다. "+" 자궁내막 상피세포와 분비선이 위축되고 자궁근층과 장막은 정상입니다. "++" 자궁내막 상피 세포와 분비선이 부분적으로 위축되고 근육층이 약간 위축되며 장막은 정상입니다. "+++" 자궁내막 상피세포와 분비선이 크게 위축되었으며, 장막은 정상입니다.

Ridit 테스트 후, 위의 표에서 볼 수 있듯이 공백 그룹과 비교하여 모델 그룹의 마우스 자궁에는 상당한 병리학적 조직 병변이 나타났습니다(P<0.01). Compared with the model group, soy isoflavone vitamin E soft capsules, Gengnianan capsules, and high-dose Cistanche deserticola phenylethanol glycoside can significantly improve the uterine pathological tissue lesions of mice (P<0.01), and medium-dose Cistanche deserticola phenylethanol glycoside can Significantly improved uterine pathological tissue lesions in mice (P<0.05). 5.2 Effect on thymus and spleen tissue morphology in mouse perimenopausal model

마이크로미터를 사용하여 각 실험군에서 각 마우스의 흉선 피질의 가장 두꺼운 부분과 가장 좁은 부분의 두께를 측정하여 평균을 얻습니다. 마이크로미터를 사용하여 비장결절에 기준선을 놓고 중심동맥을 중심으로 두 두께를 측정합니다. 양쪽 비장 결절의 두께를 계산하고 평균을 냈습니다. 결과는 표 8과 그림 10에 나와 있습니다.

표 8 폐경기 모델 마우스(-x±s)에서 흉선 및 비장의 병리학적 변화에 대한 Cistanche Deserticola 페닐에탄올 글리코시드의 효과

표 8 및 도 10에서 알 수 있듯이, 공백군과 비교하여 모델군에서는 흉선피질의 두께와 비장결절의 부피가 현저히 감소하였다(P<0.01), indicating that the thymus and spleen volumes atrophied after the perimenopausal model was created in mice. Compared with the model group, high-dose Cistanche deserticola phenylethanol glycoside can significantly thicken the thymic cortex (P<0.01), and medium-dose Cistanche deserticola phenylethanoid glycoside can significantly thicken the thymic cortex (P<0.05). Each medication group could significantly increase the volume of splenic nodules. 5.3 Effect on pituitary tissue morphology in mouse perimenopausal model

고배율 시야는 10000μm의 영역을 커버합니다.

2. 미세직사각형 프레임의 호염기구 세포와 뇌하수체 전엽 세포의 수를 측정합니다. 결과를 표 9 및 도 11~12에 나타내었다.

표 9와 그림11-12에서 공백 그룹과 비교하여 모델 그룹의 호염기구 세포와 뇌하수체 전엽 세포의 수가 크게 감소했음을 알 수 있습니다(P<0.01), indicating that after the perimenopausal model was created in mice, secretion of The cellular source of gonadotropins is reduced. Compared with the model group, each medication group could significantly increase the number of pituitary basophil cells (P<0.01). Except for the low-dose Cistanche deserticola phenylethanol glycoside group, all other medication groups could significantly increase the number of anterior pituitary cells (P<0.01). P<0.01).