초대 검토: 갓 태어난 송아지에서 초유의 중요성
Nov 13, 2023
추상적인
소의 모체 초유를 갓 태어난 송아지에게 생후 첫 시간 동안 공급하는 것이 중요합니다. 초유는 젖소가 유선 퇴화 후 생산하는 분비물로 다양한 영양소가 풍부합니다. 갓 태어난 송아지의 영양적 가치 외에도 면역글로불린은 출생 시 송아지의 순수 면역체계를 발달시키는 역할 때문에 관심을 끌고 있습니다. 송아지가 면역글로불린의 흡수를 통해 면역을 획득하는 과정을 수동 면역이라고 정의합니다. 송아지가 적절한 양의 면역글로불린을 섭취하면 성공적인 수동 면역(SPI)을 보유한 것으로 분류됩니다. 반면, 적절한 초유가 결핍되면 수동면역(FPI) 전달에 실패한 것으로 간주됩니다. 수동 면역의 전달은 생후 24~48시간에 혈청 IgG 농도를 측정하여 평가합니다. 송아지의 SPI 또는 FPI 여부에 영향을 미치는 주요 요인은 초유 IgG 농도, 급식량, 초유 급식 시 송아지의 연령입니다. 전반적인 초유 관리 관행을 평가하기 위해 송아지의 면역글로불린 흡수의 겉보기 효율성을 모니터링하는 것이 종종 권장됩니다. 혈청 IgG 분석은 직접(방사상 면역확산) 또는 간접(굴절계측) 방법으로 측정할 수 있으며 SPI 또는 FPI 유병률을 평가하는 데 사용할 수 있습니다.
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케단어:초유, 면역글로불린, 수동면역, 방사형 면역확산, 굴절계
소개
수동적 면역 전달에 대한 연구는 1892년에서 1893년 사이에 모체 항체가 신생아에게 전달되는 방법을 연구한 Paul Ehrlich의 연구로 시작되었습니다. Ehrlich는 능동 면역과 수동 면역을 최초로 구별했습니다(Silverstein, 1996). 출생 시 송아지는 소장을 통해 모체 초유로부터 면역글로불린을 흡수할 수 있지만, 송아지 연령이 출생 후 12시간을 초과함에 따라 이러한 단백질에 대한 장 투과성의 폐쇄가 가속화되고, 출산 후 24시간이 되면 투과성이 완전히 중단됩니다(Stott et al., 1979b). . 이는 Bush와 Staley(1980)에 의해 확증되었는데, 그들은 상피 세포에서 혈류로의 IgG 흡수 중단이 생후 12시간 이후에 증가하고 24시간에 최종적으로 폐쇄된다고 밝혔습니다. 장 폐쇄는 장이 거대분자를 흡수하여 혈액 순환으로 전달할 수 없는 경우로 정의됩니다(Leece and Morgan, 1962). 초기 연구에서는 식이요법이 장 폐쇄에 영향을 미치지 않는다고 밝혔지만(Patt, 1977), Stott et al. (1979a)은 초유를 먹이는 것이 어떻게 중단을 촉진하는지 그리고 초유가 부족한 송아지의 장 폐쇄가 지연되는 것을 논의했습니다. 또한, Stott et al. (1979b)은 초유 공급이 면역글로불린의 수송 수단인 음세포증을 자극한다고 설명했습니다. 그 후 거대분자 흡수가 중단되기 시작하지만 혈류로의 수송은 여전히 활성화됩니다. 또한, Stott et al. (1979b)은 송아지의 장 폐쇄가 초유 섭취 후 거대분자 흡수를 최소화하기 위한 메커니즘이라고 보고했습니다. 이 투과성을 제어하는 정확한 메커니즘은 명확하지 않습니다(Weaver et al., 2000). 그러나 이러한 장 폐쇄는 음세포 활성이 고갈되거나 장세포가 성숙한 상피 세포로 대체된 결과인 것으로 여겨집니다(Broughton and Lecce, 1970; Smeaton and SimpsonMorgan, 1985). 더욱이, 출생부터 첫 번째 초유 공급 사이의 시간이 길어짐에 따라 흡수 효율이 감소하는 것으로 나타났으며, 이는 갓 태어난 송아지에게 초유를 공급하는 시기가 중요하다는 것을 보여줍니다(Bush and Staley, 1980). 최근에는 Fischer et al. (2018)은 출생 후 6시간 이후 초유 공급이 지연되면 출생 직후 공급되는 송아지와 비교하여 IgG의 전달이 감소했다고 보고했으며, 이는 송아지에게 출생 직후 공급되어야 함을 뒷받침합니다. 그러나 데이터에 따르면 송아지는 최대 48시간 동안 초유 공급을 중단하면 IgG를 흡수할 수 있습니다. 구체적으로, 출생 후 6, 12, 24, 36, 48시간에 초유를 처음 섭취했을 때 섭취된 총 IgG의 각각 65.8, 46.9, 11.5, 6.7 및 6.0%가 혈장에 나타났습니다(Matte et al., 1982). ). 최근에는 오사카 등. (2014)은 출생 후 1시간, 1~6시간, 6~12시간, 12~18시간 이내에 송아지를 먹인 경우 겉보기 흡수 효율이 있다고 보고했습니다.AEA (이에에이지)) 값은 각각 30.5, 27.4, 23.7 및 15.8%입니다. 소장이 성숙하거나 닫히는 방식에 영향을 미치는 것으로 입증된 또 다른 요인은 IGF-1입니다. 장 성숙에 대한 역할이 명확하게 규명되지는 않았지만(Pyo et al., 2020), IGF-1는 산모의 초유에 다량으로 존재하며 체내에 존재하는 가장 풍부한 2가지 성장 인자 중 하나인 것으로 알려져 있습니다. 초유는 IGF-2와 함께 50~2 수준,000 ug/L(Pakkanen 및 Aalto, 1997; Manila 및 Korhonen, 2002). Pyo et al. (2020)은 초유 섭취가 혈청 IGF-1 농도를 높여 장 발달에 영향을 미칠 수 있다는 가설을 세웠습니다. 그러나 Pyo et al. (2020)은 3일 동안 초유를 공급하면 혈청 IGF-1가 최소한으로 증가한다고 결론지었습니다. 또한 Pyo et al. (2020)은 IGF-1 농도의 증가가 장 발달보다는 초유의 에너지량 및 영양분 소비 증가와 관련이 있을 가능성이 더 높다고 결론지었습니다. 시기 외에도 초유 면역글로불린 흡수에 영향을 미치는 주요 요인은 초유 내 면역글로불린 농도, 첫 수유 시 제공되는 초유의 총량(Stott and Fellah, 1983), 따라서 소비되는 면역글로불린의 총 그램 수, 초유 내 박테리아 수준입니다. (겔싱어 외, 2015). 연구 조사에서는 초유 품질의 주요 요소 중 하나로 IgG 농도를 강조하는 것이 일반적이지만(Godden et al., 2009a; Elsohaby et al., 2017; Heinrichs et al., 2020), 박테리아 오염도 초유 품질의 존재로 포함되어야 합니다. 초유의 오염은 갓 태어난 송아지에게 잠재적으로 부정적인 영향을 미칩니다(Gelsinger et al., 2015). 초유의 열처리는 IgG 흡수를 향상시키고 혈장 IgG 농도를 18.4% 증가시킬 수 있으며(Gelsinger et al., 2014), 초유 내 박테리아 개체수를 줄이는 탁월한 방법입니다(Heinrichs et al., 2020). 그럼에도 불구하고 열처리 기간은 소 초유의 단백질 함량이 높거나 낮을 때 영향을 미칠 수 있으므로 열처리를 엄격하게 제어하는 것을 고려해야 합니다(Tacoma et al., 2017). Tacomaet al. (2017)은 생리 활성 성분이 감소하면 프로테옴의 변화가 송아지 발달에 영향을 미칠 수 있다고 언급했습니다. 그러나 열처리된 초유를 공급함으로써 송아지에게 부정적인 영향을 미친다는 데이터는 보고되지 않았습니다. 초유를 60도에서 30분 또는 60분 동안 가열하면 IgG 농도가 최소한으로 감소하거나 영향을 주지 않으며, 박테리아 수도 감소하고 점도에도 영향을 미치지 않는 것으로 보고되었습니다(Johnson et al., 2007; Elizondo-Salazar et al., 2010) .
남성의 면역체계 강화를 위한 시스탄체의 효능
송아지가 충분한 면역글로불린을 공급받지 못하면 수동 면역 실패로 분류됩니다.증권 시세 표시기; Lombard et al., 2020), 이는 생후 첫 몇 주 동안 질병에 걸릴 위험이 더 크다(Renaud et al., 2018; Todd et al., 2018). 송아지는 혈청 IgG 농도가 다음과 같을 때 FPI를 갖는 것으로 간주됩니다.<10 mg/mL at 24 h of age (Besser et al., 1991; Furman Fratczak et al., 2011; Shivley et al., 2018). In contrast, they are considered to have successful passive immunity (SPI (스피); Lombard et al., 2020) when their serum IgG concentration is >10 mg/mL at 24 h (Weaver et al., 2000; Quigley, 2004; Godden, 2008). Recent studies have discussed that higher serum IgG thresholds to determine FPI should be evaluated. For example, Urie et al. (2018b) stated calves with serum IgG levels >15 mg/mL have reduced morbidity and mortality rates in comparison with the standard cutoff point of 10 mg/ mL IgG that is currently used. Similarly, Furman Fratczak et al. (2011) concluded that calves with serum IgG levels >15 mg/mL did not develop respiratory infections. Reports evaluating beef calves have recommended that serum IgG values of >24 and >27 mg/mL는 이환율을 감소시키고 BW 증가를 증가시킵니다(Dewell et al., 2006; Waldner and Rosengren, 2009). Lombardet al. (2020)은 최근 수동 면역의 용어 이전(티피아이(TPI)) 전달된 면역은 수동적이지만 면역글로불린의 흡수는 아니기 때문에 보다 일반적인 용어인 수동적 전달을 대체해야 합니다. 또한, Lombard et al. (2020)는 혈청 IgG의 다음 4가지 정의된 범주(혈청 IgG 수준이 25 이상인 우수, 양호, 보통, 불량)를 포함하는 새로운 TPI 표준을 도입했습니다. 0, 18.0 ~ 24.9, 10.0 ~ 17.9 및<10.0 mg/mL, respectively. They suggested that on a herd level, >송아지의 40%, 30%, 20%, 10%는 각각 우수, 우수, 보통, 불량 TPI 범주에 속해야 합니다. 초유 급여는 송아지 관리 프로그램의 중요한 구성 요소입니다(Godden, 2008). 그러나 출생 시 신선한 산모의 초유를 구할 수 없거나 품질이 좋지 않은 경우, 농부들은 초유 대체제를 사용할 수 있는 대안이 있습니다.크롬) or colostrum supplements (Lopez et al., 2020a). Colostrum products are considered replacement feeding when they provide >용량당 IgG 100g(McGuirk 및 Collins, 2004; Foster et al., 2006). 다음을 함유한 초유 제품<100 g of IgG per dose are considered supplements and are not a complete replacement for maternal colostrum feeding (Quigley et al., 2002). Colostrum replacers should not replace high-quality maternal colostrum feeding but have been determined to provide a valid alternative for immunoglobulins with no negative effect on calf performance (Lago et al., 2018). In contrast, colostrum supplements do not contain sufficient IgG to replace maternal colostrum and are formulated to be given in conjunction with colostrum to enhance IgG concentration (Quigley, 2004; Jones and Heinrichs, 2006).
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초유의 중요성
영양물 섭취
갓 태어난 송아지는 성공적인 TPI를 달성하기 위해 충분한 면역글로불린을 흡수하려면 고품질 초유가 필요합니다(Morin et al., 2021a,b). 초유는 젖소가 유방 퇴화 후 생산하는 첫 번째 분비물입니다. 소의 초유는 초유 생성으로 정의되는 과정을 통해 임신 후기에 생산되고 축적됩니다(Baumrucker 및 Bruckmaier, 2014). 초유 형성은 분만 전 3~4주에 시작되어 분만 전에 갑자기 중단되는 것으로 보고되었습니다(Brandon et al., 1971). 그럼에도 불구하고 개별 젖소에서 초유가 형성되는 정확한 시간은 알려져 있지 않으며 이는 초유 품질에서 관찰되는 큰 변화를 부분적으로 설명할 수 있습니다(Kehoe et al., 2007; Baumrucker et al., 2010). 초유는 주로 면역글로불린으로 구성되어 있으며, 이는 생후 첫 몇 주 동안 송아지에게 면역력을 제공합니다. 또한 이는 출생 시 송아지에게 최초의 영양 공급원이며 병원균으로부터 장을 보호하는 데 기여합니다(Foley and Otterby, 1978; Davis and Drackley, 1998; Calloway et al., 2002). 초유는 전유보다 DM이 1.85배, 단백질이 4.52배, 지방이 1.68배, 미네랄과 비타민이 더 많이 함유되어 있는 농축된 영양소 공급원입니다(Foley and Otterby, 1978). 유당 외에도 소의 초유에는 소량의 다른 당(즉, 포도당, 과당, 글루코사민, 갈락토사민)과 올리고당도 포함되어 있습니다(Gopal and Gill, 2000). 초유는 제한된 에너지 보유량을 가지고 태어나는 송아지의 생후 첫 몇 시간 동안의 에너지원입니다(Morrill et al., 2012). 갓 태어난 송아지 BW의 3%만이 지질이며, 이는 주로 구조적이므로 송아지의 대사 이용 가능성이 제한됩니다(Morrill et al., 2012). 결과적으로 송아지는 생후 첫 몇 시간 동안 모체 초유에 존재하는 지질과 유당을 에너지원으로 의존합니다(Morrill et al., 2012). 초유에는 또한 탄수화물, 기타 다양한 단백질, 성장 인자, 효소, 효소 억제제, 뉴클레오티드, 뉴클레오시드, 사이토카인 및 지방이 포함되어 있습니다. (McGrath 외, 2016). 또한 소의 초유에는 칼슘, 마그네슘, 철, 망간, 아연, 비타민 E, 비타민 A, 리보플라빈, 카로틴, 비타민 B12, 엽산, 콜린, 셀레늄 등 필수 비타민과 미네랄이 들어 있습니다(Foley and Otterby, 1978). ; Hammon 외, 2000). 지용성 비타민은 초유의 중요한 성분으로 간주되어 왔습니다. 그러나 수용성 비타민은 같은 정도로 연구되지 않았습니다(Kehoe et al., 2007). 비타민 E의 두 가지 주요 화합물에는 토코페롤과 토코트리에놀이 포함됩니다(Morrissey and Hill, 2009). 그러나 토코페롤은 태반을 통과하여 태아에 의해 저장될 수 있지만, 갓 태어난 송아지는 태어날 때 토코페롤 수치가 낮으므로 이를 보상하기 위해 초유 섭취가 필요합니다(Zanker et al., 2000). 댐의 건조 기간 동안 지용성 비타민과 같은 비타민을 보충하면 초유 내 비타민 농도가 증가하는 것으로 알려져 있습니다(Weiss et al., 1990). 특히 Weiss et al. (1990)은 약 60일 동안 비타민 E를 보충하면 초유의 α-토코페롤 수치가 증가한다는 사실을 발견했습니다. Parrishet al. (1949)은 소에게 토코페롤을 보충하면 초유의 비타민 A 수치가 증가한다고 언급했습니다. 초유에는 또한 UV 방사선에 노출될 때 소가 합성하는 비타민 D가 포함되어 있습니다(Bulgari et al., 2013). Fischer-Tlustoset al. (2020)은 초유와 전환유가 우유에 비해 3'-시알릴 유당과 6'-시알릴 유당을 포함한 일부 올리고당의 농도가 높다고 보고했으며, 이는 장 보호 등 송아지에게 유익한 효과가 있다고 밝혔습니다. 박테리아와 부착하여 점막을 형성합니다(Martín et al., 2002). 전반적으로 산모의 초유는 면역 체계가 활성화되고 장을 성숙시키며 장기 발달을 촉진하는 데 도움이 되는 영양분과 비영양성 인자를 모두 제공합니다(Hammon et al., 2020).
초유의 성분은 품종, 출산 전 영양, 건조 기간, 식이, 동물의 연령 및 이전 질병 노출과 같은 요인에 따라 달라질 수 있습니다(Parrish et al., 1948; Tsioulpas et al., 2007; Mann et al. al., 2016). 또한 환경 요인과 특정 병원체와의 유선 상호작용은 우유의 면역 인자 농도를 증가시킬 수 있습니다(Barrington et al., 1997; Stelwagen et al., 2009). Morrill 등이 실시한 미국 낙농장의 초유 품질에 대한 전국적인 평가. (2012)는 Parrish et al.을 지지했습니다. (1948) 및 Tsioulpas et al. (2007) 젖소의 출산력 증가에 따른 IgG 농도의 증가에 대해(첫 번째, 두 번째, 세 번째 수유에서 각각 42.4, 68.6, 95.9mg/mL). 그러나 이 평가에서는 미국 낙농장에 있는 모체 초유의 60%가 IgG 농도와 박테리아 총 플레이트 수를 고려하면 부적절하다는 결론을 내렸습니다(Morrill et al., 2012). Kehoe 등의 결과. (2007), 스완 외. (2007), Baumruckeret al. (2010), Morrill et al. (2012)은 초유 평균 IgG 농도 및 기타 구성 요소의 광범위한 변화를 보고했습니다. Baumrucker와 Bruckmaier(2014)는 젖소 간 초유 내 IgG 농도의 극단적인 변화를 검토하고 강조했습니다. 지방, 단백질, 유당 및 총 고형분과 같은 성분도 상당한 범위로 보고되었습니다(Kehoe et al., 2007; Morrill., et al., 2012). 지방은 1~26.5%, 유당은 1.2~5.2%, 단백질은 2.6~22.6%, 총 고형분은 1.7~43.3%로 다양합니다(Kehoe et al., 2007; Morrill., et al., 2012). McGrath et al.의 초유 구성에 대한 최근 검토. (2016)은 성장 인자(예: 표피 성장 인자, IGF{41}} 및 IGF{42}}), 사이토카인, 미네랄 및 pH와 같은 구성 요소를 포함했으며, 여기서 이러한 구성 요소가 초유에서 어떻게 변하는지 요약했습니다. 성숙한 우유와 비교.
어미의 태반 구조가 어미 혈청 IgG가 송아지로 전달되는 것을 방지하기 때문에 출생 시 송아지는 미성숙한 면역체계를 갖습니다(Davis and Drackley, 1998). 소에는 장벽 역할을 하고 면역글로불린 전달을 방해하는 3개의 모체 층과 3개의 태아 층이 있는 신데스모코럴 태반이 있습니다(Blum and Baumrucker, 2008; Peter, 2013). 그 결과, 송아지는 항체가 결핍된 채로 태어나 면역글로불린을 얻기 위해 초유 섭취에 의존합니다(Davis and Drackley, 1998; Calloway et al., 2002). 적절한 초유 수유를 통해 신생아가 SPI 또는 FPI를 경험하는지 여부가 결정됩니다. 수동 면역의 실패는 송아지 사망률 및 질병률 증가와 관련이 있습니다(Furman Fratczak et al., 2011; Urie et al., 2018b). 이전 보고서에 따르면 미국의 사망률과 질병률은 7.8%와 38.5%(USDA, 2010)로 나타났습니다. 이는 사망률과 질병율에 대한 권장 지침인 5%와 25%(Dairy Calf and Heifer Association, 2010)보다 높습니다. 또한, Lora et al. (2018)은 낮은 FPI 수준이 장 질환 발생에 영향을 미친다고 보고했습니다. Loraet al. (2018)은 로타바이러스와 크립토스포리디움 종의 발병 위험이 더 높다는 것을 보여주었습니다. 감염뿐만 아니라 FPI가 있는 송아지의 전반적인 설사 발생률도 포함됩니다. 또한, 초유에서 섭취한 면역글로불린이 생산과 향후 성장에 영향을 미칠 수 있으므로 적절한 초유 공급은 동물에게 장기적으로 긍정적인 영향을 미칠 수 있는 것으로 나타났습니다(Denise et al., 1989). 출생 후 5~6시간에 두 번째 초유 식사를 하면 질병률이 감소하고 이유 전 ADG가 개선되는 것으로 나타났습니다(Abuelo et al., 2021). 그러나 Cuttance et al. (2019)은 FPI가 우유 생산, 성장, 번식, 수유 성능을 포함한 생산성에 영향을 미치지 않는다고 보고했습니다. 높은 IgG 농도를 보장하려면 분만 직후 첫 번째 착유 시 초유를 수집해야 합니다. 그 이유는 후속 착유에서 초유 품질이 떨어지기 때문입니다(Stott et al., 1981). 분만 후 초유 수확 사이의 시간 간격이 증가하면 수확된 초유에서 IgG가 감소하는 것으로 나타났습니다(Morin et al., 2010). 구체적으로 초유는 분만 후 2시간 이내에 수집할 때 IgG 농도가 더 높으며, 분만 후 6, 10, 14시간에 초유 IgG 농도가 현저히 감소하기 때문입니다(Moore et al., 2005). 초기 보고에 따르면 신생아를 병원체로부터 완전히 보호하려면 300~400g의 면역글로불린이 필요하다고 합니다(Roy, 1980). 그러나 현재 권장 사항은 송아지가 SPI를 달성하려면 출생 시 150~200g의 IgG를 공급해야 한다는 것입니다(Chigerwe et al., 2008). 그러나 Godden et al. (2019)은 총 질량이 300g 이상인 사료를 공급할 것을 제안했습니다. 송아지가 초유 섭취를 통해 SPI에 도달하더라도 송아지의 면역력은 SPI 달성뿐 아니라 면역 상태와 관리 및 영양을 포함한 환경 내 병원체 노출 간의 균형에 달려 있다는 점에 유의하는 것이 중요합니다.
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초유의 면역글로불린 및 기타 성분
소의 혈류에서 초유로의 면역글로불린 전달은 세포내 수송 메커니즘을 통해 발생합니다. 혈액에서 유선으로의 IgG 전달을 촉진하는 상피 수용체가 있습니다(Larson et al., 1980). 일반적으로 면역글로불린은 소 초유에 존재하는 주요 면역 성분입니다(Stelwagen et al., 2009). 초유의 주된 면역글로불린인 IgG1은 세포외액에서 포획되어 관강 분비물로 운반됩니다(Larson et al., 1980). 면역글로불린의 전반적인 수송 과정은 출산 5주 전부터 시작되어 출산 1~3일 전에 최고조에 이릅니다(Sasaki et al., 1976). Bushet al. (1971)과 Oyeniyi와 Hunter(1978)는 분만 후 연속적인 착유에 따라 초유 내 IgG 농도가 감소하여 분만 후 첫 착유에서 IgG 함량이 가장 높다고 보고했습니다. IgG 함량의 감소는 Morin et al.에 의해 나타났습니다. (2010)은 분만 후 초유 수확의 매 시간마다 3.7%의 비율로 적용됩니다. 그럼에도 불구하고, IgG는 산후 착유에서 여전히 발견될 수 있기 때문에(Stott et al., 1981), 두 번째 및 세 번째 착유 초유는 이용 가능한 경우 여전히 송아지에게 유익할 수 있습니다. 예를 들어, Lopez et al. (2020a)는 첫 번째 먹이로 CR 40g을 보충한 두 번째 및 세 번째 착유 초유를 먹인 송아지에서는 FPI가 없다고 보고했습니다. 소 초유에는 일반적으로 다른 유형의 면역글로불린보다는 고농도의 면역글로불린, 특히 IgG가 포함되어 있습니다. IgG 클래스는 초유를 통해 전달되는 주요 면역글로불린 클래스이며, 특히 앞서 언급한 IgG1 하위 클래스입니다. 초유 내 IgG1과 IgG2의 비율은 약 7:1이며 초유에는 IgA와 IgM도 소량 포함되어 있습니다(Butler et al., 1974). 또한, 소 초유에는 우유 분비물의 면역 성분 부분에 기여하는 생존 가능한 백혈구(즉, 호중구 및 대식세포)가 포함되어 있습니다. 소 IgG 농도 범위는 50~150mg/mL이며, 그 중 대략 85~95%는 IgG, 7%는 IgM, 5%는 IgA입니다(Butler, 1969; Sasaki et al., 1976; Larson et al., 1980) ). 이 범위는 Morin et al.과 같은 특정 연구에서도 보고되었습니다. (2010) 여기서 IgG 농도는<10 to 120 g/L, and total masses produced ranged from 11 to 681 g. However, it must be appreciated that these percentages can vary greatly among cows. A study conducted by Newby et al. (1982) reported concentrations of IgG, IgA, and IgM of 75, 4.4, and 4.9 mg/mL, respectively. The mammary gland regulates the different immunoglobulin class concentrations in colostrum, although the mammary epithelium is generally not involved in their synthesis (Stelwagen et al., 2009). These immunoglobulins appear or can enter the colostrum via a paracellular route from intracellular tight junctions (Lacy-Hulbert et al., 1999), but the majority enter through a selective receptor-mediated intracellular route (Stelwagen et al., 2009). However, the mammary gland regulates the immunoglobulin concentrations present in colostrum and also contributes to immunoglobulin appearance by in situ production of its intramammary plasma cells (Stelwagen et al., 2009). The source of different immunoglobulins could be blood-derived or synthesized by intramammary plasma cells (Stelwagen et al., 2009). Overall, the main function of all these types of immunoglobulins is to detect the presence of pathogens present in the calf and eventually protect the animal against them. In general, immunoglobulins are monomeric glycoproteins with high molecular weight and composed of 4-chain molecules, with 2 light (short) and 2 heavy (long) polypeptide chains attached by disulfide bonds (Butler, 1969; Larson, 1992). The IgG class is the major immunoglobulin transferred via colostrum (85–90%). However, IgG1 represents 80 to 90% of total IgG (Butler et al., 1974; Sasaki et al., 1976, Larson et al., 1980). Immunoglobulin G is involved in various activities such as bacterial opsonization and binding to pathogens to inactivate them (Lilius and Marnila, 2001). Immunoglobulin G1 is the primary protein involved in the TPI (Butler, 1969; Butler et al., 1974). The role of IgM is to identify and destroy bacteria present in the calf's bloodstream; it functions as a mechanism to fight septicemia and is the principal agglutinating antibody. In addition, IgM has been identified to be the first immunoglobulin to appear in the B lymphocytes (Klein, 1982) and to play a role against mastitis when present in milk (Frenyo et al., 1987). The role of IgA is to prevent the attachment of pathogens and entrance into the intestine by protecting the mucosal membranes (Butler, 1969, 1983; Larson et al., 1980; Blättler et al., 2001; Răducan et al., 2013). Immunoglobulin E is also found in colostrum, though it is only known for its contribution to skin-sensitizing activity (Butler, 1983). In general, some reports mention that calves start producing their own antibodies, or endogenous production, at approximately 3 wk of age (Devery et al., 1979; Kertz et al., 2017). When determined by clearance of 125I-labeled IgG1, passively acquired IgG has an estimated half-life of 11.5 to 17.9 d (Besser, 1993; Besser et al., 1988; Sasaki et al., 1977). In addition, Murphy et al. (2014) reported that the half-life of IgG derived from maternal colostrum was longer than from CR. They reported that IgG from colostrum had a half-life of 28.5 d and IgG from CR had a half-life of 19.1 d. Nevertheless, Quigley et al. (2017) reported a higher half-life of 23.9 d for calves fed a CR that was followed by an increase until week 8. It has to be considered that Quigley et al. (2017) fed a high dose of total IgG, 450 g, which may have contributed to this higher half-life. This change in IgG level is due to normal catabolism the molecules experience (Matte et al., 1982). Macdougall and Mulligan (1969) mentioned that this catabolism rate is about 6% per day for the first 14 days of life of a newborn calf. Lopez et al. (2020b) fed either colostrum, CR, or a mixture and showed a linear decrease in IgG levels from initial levels at 24 h to nadir was 0.44 mg/mL per day for all treatments. Moreover, Quigley et al. (2017) discussed that the increase of IgG they observed from 4 wk until 8 wk could be associated with a higher IgG de novo synthesis rather than the decay of IgG derived from maternal concentrations. However, others report that endogenous production depends on IgG consumption. Husband and Lascelles (1975) and Pauletti et al. (2003) have discussed that calves that are not fed colostrum or any source of immunoglobulins experience earlier endogenous antibody production than colostrum-fed calves.
Hallberg et al. (1995) and Andrew (2001) described that colostrum has a higher SCC than regular milk. This increase in SCC is not due to mastitis infection or disease but a result of a physiological feature described as the passage of cells through gaps in the junctions of mammary epithelial cells (Nguyen and Neville, 1998). A study conducted by Ontsouka et al. (2003) demonstrated this SCC difference between colostrum and mature milk. The results reported a mean SCC for colostrum at d 2 of 1,479,000 ± 585,000 cells/mL compared with a mean SCC of mature milk (wk 4) of 41,000 ± 15,000 cells/mL. Bovine colostrum can also be a source of pathogens to a newborn calf, such as Escherichia coli, Salmonella spp., Mycoplasma spp., and Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis (Houser et al., 2008). These pathogens originate from cow mammary gland infections, improper colostrum storage or handling, and incorrect colostrum harvest (Streeter et al., 1995; Stewart et al., 2005). Colostrum is considered to be of good quality when its IgG concentration is >50mg/mL, 세균수는<100,000 cfu/mL and coliform counts are <10,000 cfu/mL (McGuirk and Collins, 2004; Chigerwe et al., 2008).
관심을 끄는 또 다른 구성 요소는 일부 구성 요소의 단백질 분해를 억제하는 데 기여할 수 있기 때문에 소 초유의 트립신 억제제 농도입니다(Quigley et al., 2005a). 트립신 억제제는 초유 성분의 활성을 보존하고 흡수에 도움이 되는 것으로 보입니다(Hernández-Castellano et al., 2014). 그러나 초유의 열처리가 유익할 수 있지만(Gelsinger et al., 2015; Saldana et al., 2019) 트립신 억제제 농도도 감소한다는 점을 고려해야 합니다(Mann et al., 2020). 분만 후 초유 내 트립신 억제제 농도는 성숙유에 비해 높으며 분만 후 2주가 되면 약 1/100으로 감소합니다(Sandholm and Honkanen-Buzalski, 1979). Quigleyet al. (1995a)은 산모의 초유 내 트립신 억제제 농도가 56mg이라고 보고했는데, 이는 초유 1데시리터당 트립신이 억제된 밀리그램으로 보고되었습니다. 그들은 트립신 억제제의 존재가 총 면역글로불린(r=0.54), 지방, 총 N(r=0.70), 단백질 N(r=0.70)과 상관관계가 있다고 밝혔습니다. ), 비카세인 N(r=0.64) 및 초유의 TS(r=0.66). Quigleyet al. (1995a)은 면역글로불린 함량이 높은 초유는 트립신 억제제 함량이 더 높고, 반대로 품질이 낮은 초유는 트립신 억제제 함량이 적어 TPI에 영향을 미칠 수 있다고 결론지었습니다. Quigleyet al. (1995b)는 갓 태어난 Jersey 송아지에게 먹이는 초유 1L에 대두 트립신 억제제 1g을 첨가하면 혈청 IgG 농도가 27.9mg/mL에서 34.4mg/mL로 증가한다는 사실을 발견했습니다. 트립신 억제제 외에도 관심 있는 다른 성분은 락토페린과 트랜스페린입니다. 이는 철 결합 단백질입니다(Jenness, 1982). 트랜스페린과 락토페린의 농도는 추가 착유에 비해 첫 번째 착유 초유에서 더 높은 것으로 나타났습니다(각각 1.07 및 0.83mg/mL). 분만 후 약 3주 후에 농도는 거의 무시할 수 있습니다(0.02 및 0.09mg/mL). , 각각; Sánchez et al., 1988). 이들 구성요소의 생물학적 기능 중 하나는 신생아의 장내 세균총 선택과 관련이 있는 것으로 여겨집니다(Ribadeau-Dumas, 1983).
cistanche tubeulosa - 면역 체계를 향상시킵니다.
신생아의 IgG 흡수
초유는 송아지가 태어난 직후에 먹여야 하며 보호 수동 면역을 제공하기 위해 지체하지 않아야 합니다(Fischer et al., 2018). 갓 태어난 송아지는 태어날 때 아직 면역체계가 발달하지 않았습니다(Nocek et al., 1984; Stelwagen et al., 2009). 분만 후 착유 횟수가 증가함에 따라 초유 내 IgG, M, A 농도가 다른 비율로 감소하기 때문에 신생아에게 초유를 먹이는 것이 중요합니다(Stott et al., 1981). 높은 IgG 흡수율을 달성하려면 초유 공급 시기가 중요합니다. 초유에서 송아지의 혈류로 면역글로불린이 전달되는 것은 생후 첫 몇 시간 동안 장에서 단백질을 흡수하는 일시적인 능력 때문입니다. 출생 후 약 24시간이 지나면 장의 세포는 더 이상 이러한 면역글로불린이나 기타 큰 분자를 흡수하고 운반할 수 없습니다. 이 투과성 폐쇄는 McCoy et al.에 의해 보고되었습니다. (1970)은 출생 후 24시간에 초유를 먹이는 것이 혈청 글로불린 수치에 변화를 주지 않는다는 것을 입증한 연구에서 밝혔습니다. 결과적으로, 그 시점에서는 장이 초유 단백질을 통과할 수 없었으며, 출생 후 24시간 동안 초유를 먹이는 것은 부적합하다고 제안할 수 있습니다. 일반적으로 초유에서 혈류에 흡수되는 총 항체의 비율(AEA)은 고품질 초유가 제공되더라도 20~35% 범위입니다(Quigley and Drewry, 1998; Jones and Heinrichs, 2006). 그러나 AEA는 연구마다 다르며 일부 보고서에서는 이 범위를 벗어난 값을 표시했습니다. 예를 들어 Lago et al. (2018)은 IgG 농도가 63.6g/L인 어미 초유를 먹인 송아지의 경우 32.6~76.9%(평균 35.9%) 범위를 보고했습니다. 또한 Halleran et al. (2017)은 10~50% 사이의 범위를 보고했으며, 공급된 IgG의 총량과 AEA 사이에는 아무런 관계가 없다고 보고했습니다. 그러나 그들은 송아지 체중을 추정하고 추정 혈장량을 7%로 사용했는데, 두 가지 모두 결론에 영향을 미칠 수 있었습니다. Fischeret al. (2018)은 초유 공급을 6~12시간 지연하면 IgG 수동 전달에 영향을 미치며, 출생 시 초유 공급을 지연하는 것은 장 투과성 폐쇄에 영향을 미치고 AEA를 감소시킬 수 있다고 밝혔습니다. 송아지가 흡수하는 IgG의 양에 기여하는 주요 요인 중 일부는 출생 후 제공되는 초유의 품질(IgG 농도)과 양(섭취량)입니다(Godden, 2008). 갓 태어난 송아지의 SPI를 보장하기 위한 초유 공급 외에도 질병률을 최소화하기 위해 적절한 관리 관행을 실행해야 합니다(Quigley et al., 2017).
일반적으로 면역글로불린은 신생아의 소장 상피에서 흡수되어 림프계를 통과하고 최종적으로 흉관을 통해 전신 순환계로 들어갑니다(Comline et al., 1951; Bush and Staley, 1980; Besser and Gay, 1994) . 송아지 시스템에는 면역글로불린 제거와 내인성 생산의 시작이 결합되어 있습니다. 신생아는 섭취된 IgG의 약 70%를 장 내강을 통해 제거하는 것으로 알려져 있습니다(Besser et al., 1988). 더욱이, 면역글로불린은 항원 결합제로서 기능하는 위장관에서 발견되었습니다(Besser et al., 1988). 송아지는 생후 36시간에서 3주 사이에 내인성 IgG 합성을 시작하는 것으로 알려져 있습니다(Devery et al., 1979). 그러나 초유가 결핍된 송아지나 충분한 초유를 공급받지 못한 송아지는 생애 초기에 항체를 생성하기 시작하며(Husband and Lascelles, 1975) 이미 약 2세에 성소와 유사한 세포 매개 면역 반응을 보이는 것으로 연구되었습니다. 주(Barrington and Parish, 2001). Comlineet al. (1951)은 갓 태어난 Jersey 송아지에 십이지장, 맹장, 흉관에 캐뉼러를 삽입하고 무지방 초유를 장에 직접 투여하여 면역글로불린의 흡수 경로를 연구했습니다. 그들은 글로불린이 문맥 순환계로 직접 운반되지 않고 오히려 림프를 거쳐 말초 혈액으로 운반된다는 사실을 발견했습니다. 구체적으로, 장내 면역글로불린 흡수는 비선택적이며 음세포증식 메커니즘에 의해 달성되는 것으로 이해됩니다(Besser and Gay, 1994). Staleyet al. (1972) 장은 특정 수준의 선택성을 가지고 있다고 언급했습니다. 그러나 그들은 신생아의 장이 이종 단백질을 흡수하거나 투과할 수 있지만 페리틴은 흡수하지 않는다는 결론을 내렸습니다. 유사하게 Bush와 Staley(1980)도 장내 면역글로불린 흡수가 특정 물질만 흡수하는 근단세뇨관 시스템에 의해 이루어진다고 언급했습니다. IgG를 방해하는 것으로 밝혀진 요인이 있습니다. 예를 들어, 초유에 존재하는 박테리아 오염은 박테리아가 이 분자에 결합하여 흡수에 영향을 미칠 수 있기 때문에 흡수에 영향을 미칠 수 있습니다(Gelsinger et al., 2014). 이 문제는 초유를 열처리함으로써 해결되었으며, 신생아 송아지에서 24시간에 혈청 IgG 농도를 증가시키는 것으로 나타났습니다(Gelsinger et al., 2014, 2015; Saldana et al., 2019). 또한 일부 면역글로불린은 혈장이 아닌 다른 경로를 택하거나 대변으로 배설될 수 있으므로 모든 면역글로불린이 전신 순환계로 들어가거나 발견될 수는 없다는 점을 고려해야 합니다(Matte et al., 1982).
초유 공급 방법
생산자는 갓 태어난 송아지의 SPI를 보장하기 위해 공급하는 초유의 양을 고려해야 합니다. 충분한 초유 소비를 보장하기 위해 생산자는 송아지가 어미에서 빨아먹을 수 있는 초유에 의존해서는 안 됩니다(McCoy et al., 1970). 왜냐하면 출생 후 송아지가 초유를 소비한 양과 시간을 측정하는 것이 불가능하기 때문입니다. 송아지가 젖을 빨 수 있는 시간의 지연은 2~6시간, 7~12시간, 13~24시간, 25~48시간 동안의 지연된 젖먹이 사망률이 각각 5%, 8%, 11%, 20%이기 때문에 매우 중요합니다. 마거리슨과 다우니, 2005). 송아지의 25~30%가 6시간까지 어미에서 젖을 빨지 못하고, 약 20%가 18시간까지 젖을 빨지 못하는 것으로 보고되었습니다(Moran, 2012). 이는 송아지가 어미에서 초유를 빨도록 허용하는 것만으로도 송아지가 자발적으로 적절한 초유를 섭취하지 못하기 때문에 FPI에 어떻게 영향을 미칠 수 있는지를 보여줍니다(Besser et al., 1991). 흥미롭게도 Stott et al. (1979a)은 젖병에서 먹인 송아지와 비교하여 어미에서 초유를 빨아먹은 송아지의 흡수 속도와 최대 IgG 흡수가 더 우수하다고 보고했습니다. Stottet al. (1979a) 및 Selman et al. (1971)은 신선한 초유를 통해 송아지에게 전달되는 어미 효과가 있다는 가설을 세웠습니다. 이 효과는 장 상피의 흡수 세포 활동을 자극할 수 있는 전달 인자로 작용할 수 있습니다. 그러나 이를 뒷받침할 증거는 충분하지 않습니다(Stott et al., 1979a). 또한 대부분의 보고서에서 어미에게만 젖을 먹이는 것이 허용된 송아지는 손으로 키운 송아지보다 혈청 IgG 농도가 낮고 질병에 더 취약합니다(Brignole and Stott, 1980; Nocek et al., 1984; Besser et al., 1991). Haines와 Godden(2011)은 갓 태어난 송아지에게 언어적, 신체적 자극을 포함하는 인공적인 양육을 수행하여 양육의 효과를 평가했습니다. 그들은 인공 양육을 받은 송아지와 그렇지 않은 송아지 사이에 IgG 흡수에 차이가 없다고 보고했습니다(각각 15 및 13.9 mg/mL).
산모의 초유는 젖꼭지병, 양동이 또는 식도 공급 장치를 통해 먹일 수 있습니다(Jones and Heinrichs, 2006). 많은 양의 액체가 필요하기 때문에 식도 피더를 사용하는 것이 권장되는 경우가 많습니다. 물통이나 젖꼭지 병을 사용하여 손으로 먹이는 것이 가장 일반적이었고(64%) 식도 공급 장치를 사용하는 것이 가장 흔하지 않았습니다(2.3%; Heinrichs et al., 1994). NAHMS(2014)의 보다 최근 데이터에 따르면 암송아지의 81.6%, 15.7%, 2.7%가 손으로만 먹이는 방식(식도 공급 장치 포함), 손으로 먹이는 경우, 젖먹이 어미, 젖먹이 어미만 먹이는 것으로 나타났습니다. 모든 유형의 초유 수유는 올바른 초유 품질 및 수유량 매개변수를 고려한다면 신생아에게 필요하고 충분한 양의 영양소와 면역글로불린을 제공할 수 있는 능력을 갖추고 있습니다(Roy, 1972). 그러나 종아리에 부적절하게 배치된 식도 공급기를 사용하면 식도가 손상되거나 더 중요하게는 폐의 액체 흡인이 발생할 위험이 있습니다(Jones and Heinrichs, 2006). 식도 공급 장치를 통해 갓 태어난 송아지에게 초유를 공급하는 것은 성공적인 IgG 수동 전달을 달성하기 위한 시간을 절약하고 최적의 방법인 것으로 보고되었습니다. (LateurRowet 및 Breukink, 1983; Elizondo-Salazar 외, 2011) 그러나 이 방법과 관련된 한 가지 잠재적인 단점은 송아지에게 식도 공급 장치를 공급할 때 식도 홈 반사가 발생하지 않는다는 것입니다. 송아지가 식도고랑 반사를 경험하지 못할 때마다 초유는 복부보다 먼저 전위에 들어간 다음 소장으로 들어갑니다. 반면, 송아지가 어미로부터 젖을 빨거나 젖꼭지병을 통해 먹이를 주면 식도고랑 반사가 일어나 초유가 바로 위위로 이동하여 소장으로의 이동이 더 빨라집니다. 그러나 식도 공급 장치를 통해 송아지에게 먹이를 공급할 때 초유가 전위(세망루멘)에서 위까지 통과하는 것은 몇 분 내에 이루어지며 면역글로불린 흡수에는 영향을 미치지 않습니다(Lateur-Rowet 및 Breukink, 1983). Elizondo-Salazaret al. (2011)은 젖꼭지병이나 식도 공급 장치를 통해 초유를 공급한 송아지 사이에 IgG 흡수에 차이가 있는지 비교하기 위한 연구를 수행했습니다. 그들은 24시간 또는 AEA 속도에서 혈청 IgG 농도에 차이가 없음을 발견했는데, 이는 식도 피더를 사용해도 IgG 흡수가 감소하지 않음을 시사합니다. 유사하게, Desjardins-Morrissette et al. (2018)은 고품질 초유를 식도 공급 장치나 젖꼭지 병으로 공급했을 때 IgG 흡수의 차이를 발견하지 못했고, 식도 공급 장치나 젖꼭지 병 공급 모두 소장으로의 복부 배출에 영향을 미치지 않았습니다. Besseret al. (1985)은 식도 공급 장치를 이용한 초유 공급이 전위에서 복부 및 소장까지의 빠른 흐름을 가져 면역글로불린의 효과적이고 충분한 흡수를 제공한다고 결론지었습니다. Besser 등이 실시한 또 다른 연구. (1991)은 송아지에게 초유를 공급하는 3가지 방법을 평가한 결과 튜브 공급이 SPI에 도달하는 좋은 대안임을 발견했습니다. Besser 등의 연구. (1991)은 신생아에게 어미의 초유, 유두병 급식 또는 식도관 급식 중 하나로 초유를 먹인 3개 무리를 관찰했습니다. 개별 방법 중 수동 면역 실패(IgG 농도 < 10 mg/mL)는 각각 61.4, 19.3 및 10.8%였습니다. 이러한 결과는 산모의 젖먹이 대신 SPI를 보장하는 방법으로 더 많은 양의 초유를 공급할 수 있는 능력으로 설명될 수 있습니다.
다량의 초유를 공급하는 대부분의 상황에서 AEA가 감소하는 경향이 있다는 점은 주목할 가치가 있습니다. 이는 특정 시간에 흡수될 수 있는 IgG의 양에 상한선이 존재할 수 있다는 제안으로 설명할 수 있습니다(Saldana et al., 2019). Lopezet al. (2020a)는 출생 시 3.78L의 대용량 초유분을 섭취했을 때 더 많은 총 IgG 질량이 공급됨에 따라 AEA가 감소하는 유사한 결과를 보고했습니다. Lopezet al. (2020a)은 또한 더 많은 양의 총 고형분을 함유한 초유와 함께 더 많은 양의 IgG를 공급할 때 AEA 감소로 인해 IgG 흡수의 상한이 존재할 수 있음을 발견했습니다.
When colostrum reaches the abomasum, it forms a curd from the reaction of renin with casein and milk fat, which separates out the whey. Curd formation occurs in milk, colostrum, and CR or milk replacers that have casein and milk fat, as they are the molecules to which chymosin specifically binds (Yvon et al., 1984; Longenbach and Heinrichs, 1998). This curd formation is somewhat detrimental to the digestion and absorption of IgG and other nutrients found in colostrum (Miyazaki et al., 2017). It is attributed to the fact that IgG is found in the whey portion of colostrum (Besser and Osborn, 1993) and permits a faster release to the intestine for absorption while leaving fat and casein in the abomasum for later absorption (Cruywagen et al., 1990). Data from Cabral et al. (2014) and Besser and Osborn (1993) suggest that casein competes with IgG for absorption in the intestinal tract, and, as a result, AEA of IgG may be negatively affected. Also, Davenport et al. (2000) demonstrated that the addition of large amounts of casein (>초유 내 500g)은 IgG 흡수율에 영향을 미칠 수 있으며, 이는 카제인이 없거나 적은 양일 경우 IgG 흡수가 향상될 수 있음을 다시 시사합니다. 유사하게, Lopez et al. (2020a)은 카세인이 제거된 상업용 CR을 공급하면 고품질 모체 초유(IgG 106g/L)에 비해 AEA가 24.4%에서 40.1%로 증가한 것으로 나타났습니다. 또한 그들은 카세인이 제거된 CR로 저품질 모체 초유(면역글로불린 30g/L, 총 고형분 함량이 낮음)를 보충하면 AEA가 최대 54.3% 증가했다고 보고했습니다. AEA를 평균 이상으로 높이는 메커니즘을 지정할 수는 없었지만 Lopez et al. (2020a)는 이 식사의 낮은 삼투압, 카세인 감소, 총 고형분 함량 감소가 IgG 흡수 방식에 영향을 미쳤을 수 있다고 제안했습니다. Cabralet al. (2014)은 CR에 NaHCO3를 첨가하면 카세인 함량 증가로 인해 응고 특성이 증가할 수 있다고 제안했습니다. 카제인 응고 또는 커드 형성이 IgG 흡수에 도움이 될 수 있다는 것이 제안되었습니다(Cabral et al., 2014; Miyazaki et al., 2017). 그러나 과도한 양이 존재할 경우 초유 삼투압이 증가할 수 있습니다. 이로 인해 윗부분에서 장까지의 통과 속도가 느려지고 따라서 윗부분 비우기 속도가 감소합니다(Constable et al., 2009; Cabral et al., 2014; Burgstaller et al., 2017). Constableet al. (2009)은 중탄산염, 아세트산염, 구연산염을 함유한 경구 재수화 용액을 첨가하면 젖소의 삼투압 증가에 기여하여 복부 배출율을 감소시키는 것으로 나타났습니다. 면역글로불린이 응유에 갇혀 있으면 흡수가 느려질 수 있습니다. 초유 대체제 삼투압농도는 제조 기술이 다르기 때문에 다양할 수 있지만 약 300mOsm의 값이 보고되었으며(Cabral et al., 2014), Quigley et al. (2019)은 산모 초유의 평균 삼투압 값이 332mOsm이라고 보고했습니다. 일반적으로 포유류(사람) 우유의 삼투압농도는 평균 300mOsm/kg입니다(Rochow et al., 2013). 우유나 초유에 추가 제품을 추가하면 삼투압이 증가합니다. 예를 들어, CR에 NaHCO3를 추가하면 삼투압농도가 301mm에서 515mm로 증가했지만(Cabral et al., 2014), 이는 단백질 함량과 공급원에 따라 달라집니다(Burgstaller et al., 2017). 소 우유의 삼투질농도 값은 275~285mOsm/L인 반면 일부 우유 대체 제품은 600mOsm/L까지 올라갑니다.
Saldana et al.의 결과 분석. (2019)은 IgG 흡수 상한의 존재와 관련하여 이전에 추측되었지만 철저하게 입증되지 않은 장 포화가 존재할 수 있다는 가정을 유도합니다. 이 개념은 Besser et al.에 의해 처음 제안되었습니다. (1985)는 송아지가 정해진 초유 공급량에서 흡수할 수 있는 IgG의 양에 생리학적 한계가 있을 수 있다고 밝혔습니다. Besseret al. (1985)은 이 효과에 대한 한 가지 가능한 메커니즘이 장에서 IgG 분자를 흡수하는 역할을 하는 거대분자 수송 메커니즘의 포화일 수 있다고 제안했습니다. 이러한 포화 가능성은 IgG 및 총 고형분 농도를 포함하여 사료 공급 CR의 초유 구성과 관련이 있지만 삼투압이 중요한 역할을 할 수 있습니다.
초유 부족을 극복하다
저장
갓 태어난 송아지에게 초유는 매우 중요하기 때문에 모든 낙농장은 질병이 없는 고품질 초유를 적절하게 공급해야 합니다. 댐에서 초유를 공급할 수 없는 경우 농장에서는 갓 태어난 송아지에게 초유를 적절하게 공급하기 위한 보충 전략을 마련해야 합니다. 잉여 초유를 저장하는 것은 경제적인 대안입니다. 초유는 냉장 또는 냉동으로 보관할 수 있지만 일반적으로 품질을 유지하고 박테리아 성장을 방지하기 위해 냉동 보관합니다. 다양한 저장 방법은 박테리아 성장에 미치는 다양한 영향으로 인해 초유 품질에 영향을 미칩니다(Morrill et al., 2012). 농장에는 때때로 적절한 초유 보관 프로토콜이 없는 것으로 알려져 있습니다. 신선한 초유를 수집 후 2시간 이내에 먹이지 않으면 작은 크기의 용기에 담아 4도에서 냉장 보관하면 짧은 시간 동안 세포 성분과 면역글로불린 구성을 유지할 수 있습니다(Manohar et al., 1997). 상온에 방치된 초유는 박테리아 증식이 급격히 증가하는 것으로 나타났습니다(Stewart et al., 2005). Morrill et al. (2012)은 냉장 초유 샘플의 총 플레이트 수가 최대 100만 cfu/mL에 이른다고 보고했습니다. Stewartet al. (2005)은 초유의 박테리아 수가 젖소에서 수확할 때 가장 낮은 경우가 많지만 양동이나 저장 용기로 옮기는 단계에서 초유가 박테리아로 오염되는 경우가 많다는 것을 보여주었습니다. 대부분의 권장 사항에서는 일부 박테리아가 추운 환경에서도 중간 정도의 성장률로 증식할 수 있으므로 초유를 냉장 보관 시 48시간 이상 보관해서는 안 된다고 명시하고 있습니다(Stewart et al., 2005). 이 기술은 초유를 냉동하는 것이 초유를 보존하는 가장 좋은 방법이고 1년 이상 동안 영양소 및 IgG 함량 저하를 방지할 수 있기 때문에 단기 보관 대안으로만 권장됩니다(Foley 및 Otterby, 1978; Davis 및 Drackley, 1998). 박테리아 증식 외에도 초유 저장 기술이 송아지 혈청 IgG 농도에 미치는 영향도 평가되었습니다. 이전에 냉동된 저온살균 초유를 먹이거나 갓 수확한 초유를 먹이면 송아지의 혈청 IgG 농도가 4, 13, 22도에서 48시간 동안 보관된 초유를 먹인 송아지에 비해 가장 높은 것으로 나타났습니다(Cummins et al., 2017). 결과적으로, 신선하거나 이전에 냉동된 초유는 둘 다 허용 가능한 저장 및 공급 기술로 간주됩니다(Holloway et al., 2001).
초유 대체제
Quigley et al.에 따르면 초기 CR에는 용량당 IgG가 100g 이상이 아니었습니다. (2001). 결과적으로 영양가를 향상시키기 위해 다른 성분(즉, 포도당, 글리신, 소금, 유화제, 레시틴, 비타민/미네랄 프리믹스, 염화칼륨, 황산마그네슘 및 향료)을 첨가했습니다. 현재 CR 제품은 외인성 IgG 공급원을 제공하고(Cabral et al., 2013) 젖산, 혈액 또는 혈청 또는 계란 공급원으로 만들어지지만(Quigley, 2004; Swan et al., 2007) 영양 구성은 다음과 같은 이유로 다양합니다. 다양한 제조 절차(Quigley 등, 2002; Foster 등, 2006; Swan 등, 2007). 일부 생산자는 젖소가 유방염이나 Mycobacterium avium ssp와 같은 우유 병원균과 같은 질병을 앓고 있는 기간 동안 송아지에게 적절한 모체 초유를 공급할 수 없을 때 CR을 사용합니다. 흔히 요네병으로 알려진 부결핵증(Pithua et al., 2009). 모체 초유는 또한 갓 태어난 송아지의 대장균과 소 백혈병의 원인이 될 수 있으며 이는 송아지 건강에 영향을 미칠 수 있습니다(Cabral et al., 2013). CR 제품을 사용하면 FPI를 예방하는 동시에 병원체 노출을 줄일 수 있습니다. CR은 산모의 초유보다 박테리아 개체수가 적기 때문입니다(McGuirk 및 Collins, 2004; Foster et al., 2006). 전반적으로 농장에서 초유를 구할 수 없는 경우 CR은 저장 및 사료 준비가 용이하기 때문에 대안이 될 수 있지만(Priestley et al., 2013), 고품질 초유의 참조 표준 식사를 대체해서는 안 됩니다(Cabral et al. ., 2013). CR 급식의 가능한 장점 중 하나는 준비가 쉽다는 것입니다. 이로 인해 일부 농장의 초유 은행에서 산모의 초유를 해동하는 것보다 더 빠르게 초유를 급식할 수 있습니다. 그럼에도 불구하고 CR 제품에는 농장 특정 병원체로부터 신생아를 보호할 수 있는 항원 특정 항체가 부족할 수 있다는 사실이 논의되었지만(Swan et al., 2007) 부정적인 영향이 보고된 바는 없습니다.
여러 연구(예: Jones et al., 2004; Lago et al., 2018; Lopez et al., 2020a)에서는 CR이 산모에게 초유를 먹이는 대신 사용할 수 있음을 보여주었습니다. 갓 태어난 송아지. Joneset al. (2004)은 24시간 혈장 내 IgG 농도가 모체 초유(평균 ± SD, 13.78 ± 0.39 g/L)를 먹인 송아지와 CR(13.96 ± 0.38 g)에서 같은 양의 IgG를 먹인 송아지 사이에 차이가 없다고 보고했습니다. /엘). 또한 성장 발달 척도(즉, ADG, 기갑 키, 엉덩이 높이, 신체 길이 및 심장 둘레)는 치료 간에 차이가 없었습니다. 그럼에도 불구하고 CR에 존재하는 면역글로불린은 농장 특정 병원체에 대한 보호가 부족할 수 있다는 점을 고려해야 합니다(Jones et al., 2004). 모체 초유가 선호되는 사료이지만 CR은 갓 태어난 송아지에게는 허용되는 대안이 될 수 있습니다.
IgG 농도 분석
참조 방법
혈청 IgG 농도는 직접적인 방법과 간접적인 방법으로 측정할 수 있지만 방사형 면역확산(RID; 직접 방법)과 ELISA(간접 방법)가 이 분석을 위한 참조 표준으로 간주되어 왔습니다(Coons et al., 2012; Deelen et al. , 2014; Wilm 외, 2018). 이 두 방법 모두 FPI가 있는 송아지를 식별하는 데 적합한 방법으로 간주되었습니다(Dawes 등, 2002; Coons 등, 2012; Priestley 등, 2013). 그러나 Gelsinger et al. (2015)는 ELISA 또는 RID로 분석할 때 초유와 혈청 IgG의 상관관계를 평가했으며 혈장과 가열되지 않은 초유에 대해 RID와 ELISA 사이에 약한 상관관계가 있음을 발견했습니다. 또한 Gelsinger et al. (2015)은 RID와 비교하여 ELISA 분석이 더 낮은 IgG 농도 결과를 제공하지만 두 방법 간의 직접적인 비교는 도출할 수 없음을 보여주었습니다. 대조적으로, Dunn et al. (2018)은 초유(R2=0.83)와 혈청 IgG 농도(R{11}}.97)에 대한 이러한 방법 사이의 양의 상관관계를 보고했습니다. Dunnet al. (2018)은 또한 RID와 ELISA 결과를 직접 비교하지 말 것을 권장했지만 두 방법 모두 일관되고 복제 가능한 결과를 제공했습니다. 전반적으로, ELISA에 비해 RID의 유일한 확실한 장점은 덜 광범위한 희석이 필요하다는 점이며, 이는 결과의 변화에 기여할 수 있습니다(Gelsinger et al., 2015b). 이 절차는 Fahey와 McKelvey(1965) 및 Mancini et al.에 의해 개발되었습니다. (1965)은 특정 항체와 반응하는 혈청에 존재하는 다양한 단백질에 대해 특이적입니다. 이 분석의 작용 방식은 웰의 항체 함량과 혈청 샘플의 항원 사이의 반응에 따라 달라집니다. 샘플에 존재하는 단백질은 평형에 도달할 때까지 웰 내에서 확산됩니다(Guidry and Pearson, 1979). 그 후, 실온에서 24시간 이내에 침전 고리가 형성됩니다. 링 직경은 샘플 내 단백질의 농도에 비례하며(Guidry and Pearson, 1979), 키트에 제공된 표준을 사용하여 선형 회귀 분석을 통해 IgG 계산을 수행할 수 있습니다(Guidry and Pearson, 1979; Gelsinger et al. , 2015b). 요약하면, 이 분석은 24시간에 평형에 도달할 때까지 우물 주위에 고리를 침전시키는 특정 항혈청으로 항원의 확산을 통해 작동합니다.
간접 방법
널리 사용되는 간접적인 방법은 굴절계에 의한 혈청 총 단백질(STP) 측정으로, 혈청 내 총 단백질로부터 IgG를 추정합니다(Deelen et al., 2014; Thornhill et al., 2015; Elsohaby et al. ., 2019). 혈청 총 단백질은 송아지 질병률을 예측하기 위한 IgG 농도의 좋은 지표로 간주되어 왔습니다(Naylor and Kronfeld, 1977; Naylor et al., 1977; Tyler et al., 1996; Weaver et al., 2000). 이 방법은 총 단백질을 측정하기 때문에 FPI 및 IgG 농도를 예측하기 위한 간접 측정으로 널리 사용되어 왔습니다. 면역글로불린은 갓 태어난 송아지의 혈류에 존재하는 전체 단백질의 큰 부분을 차지하며, 이는 혈청 내 비면역글로불린 단백질이 일정하게 유지되기 때문에 적절한 추정치를 제공합니다(Calloway et al., 2002). STP와 IgG의 상관관계는 CR을 먹인 송아지에서 다양할 수 있습니다. 이러한 변화는 산모의 초유와 CR에 존재하는 총 단백질에 대한 IgG의 비율이 다르기 때문에 발생하며, 이는 굴절계가 측정하는 총 단백질 추정치에 영향을 미칩니다(Quigley et al., 2002). 전체적으로, 산모의 초유 내 단백질에 대한 IgG의 평균 비율은 400~500mg/g 범위입니다(Quigley et al., 2002).
비록 Wilm et al. (2018)은 STP가 RID와 높은 상관관계가 있다고 밝혔습니다(Quigley et al.). (2002) 및 Lago et al. (2018)은 CR 제품을 먹인 송아지의 STP 측정이 FPI를 식별하기 위한 잘못된 추정치를 가질 수 있다고 언급했습니다. Lopezet al. (2020a)은 낮은 카세인 CR을 먹인 송아지의 평균 STP 수준이 평균 혈청 IgG가 10mg/mL를 초과하더라도 FPI 역치인 5.2g/dL 미만임을 발견했습니다. 유사하게, Quigley et al. (2002) 및 Lago et al. (2018)은 송아지에게 CR을 먹였을 때 낮은 STP를 발견했습니다. 이는 송아지가 카제인 함량이 낮은 CR을 공급할 때마다 STP가 낮더라도 여전히 적절한 혈청 IgG 농도를 달성한다는 것을 의미합니다. Lopezet al. (2020a)은 CR을 먹인 송아지, 특히 유청 기반 CR을 먹인 송아지에서 FPI를 보다 정확하게 식별하기 위해 새로운 STP 컷오프 포인트를 사용해야 한다고 제안했습니다. Lopezet al. (2020a) 및 Quigley et al. (2002)은 송아지에게 CR을 공급할 때 4.2g/dL의 STP 컷오프 포인트가 10mg/mL의 혈청 IgG 농도를 더 잘 예측한다고 보고했습니다. 전반적으로 송아지에게 CR 제품을 공급한 경우 FPI 또는 SPI를 올바르게 분류하기 위해서는 더 많은 연구가 필요합니다.
수동적 면역의 실패
수동 면역의 실패는 혈청 IgG 농도가 있는 송아지에서 고려되는 상태입니다.<10 mg/mL at 24 h (Besser et al., 1991; Furman-Fratczak et al., 2011; Shivley et al., 2018). In contrast, calves with a serum IgG concentration >24시간에 10 mg/mL은 SPI를 갖는 것으로 간주됩니다(Quigley, 2004; Lombard et al., 2020). 또한, 24시간에 혈청 IgG 농도를 측정하기 위해 STP는 송아지의 FPI를 결정하는 데 사용되는 분석법이기도 합니다. FPI를 결정하기 위한 5.0, 5.2 또는 5.5g/dL를 포함한 다양한 STP 농도 종점은 보고되었습니다(Tyler et al., 1996; Donovan et al., 1998; Priestley et al., 2013). 그러나 Buczinski et al. (2018)은 5.2 또는 5.5g/dL의 STP 컷오프 포인트가 FPI 측정에 가장 적합하다고 결론지었습니다. Burzynskiet al. (2018)은 5.5g/dL의 임계값이 위음성의 비율을 최소화할 수 있다고 권장했습니다. Quigley 등이 실시한 연구. (2002)은 CR 제품과 모체 초유 사이의 비면역글로불린 단백질 함량의 차이가 송아지에게 CR을 공급할 때 굴절계에 의한 혈청 IgG 수준의 일관된 예측에 영향을 미친다고 밝혔습니다. 그 결과, 모체 초유 대신 CR을 공급한 송아지에서 FTP를 결정하는 종점으로 4.9g/dL의 값이 더 적합하다는 결론이 나왔습니다. Quigleyet al. (2002)은 혈청 IgG 농도를 추정하기 위한 굴절률 측정의 부정확성을 제안했습니다. 농장의 FPI 비율을 평가하기 위해 현재 STP 굴절률 측정 기준점을 추가로 조사하는 것이 좋습니다. 영양 및 환경 관리 전략(즉, 위생, 사육 및 병원체 노출)과 같은 외부 요인의 존재는 송아지가 성공적인 수동적 이동을 경험하더라도 송아지의 건강과 발달에 해로울 수 있습니다(Davis and Drackley, 1998; Swan et al. , 2007).
겉보기 흡수 효율성
겉보기 흡수 효율은 초유 IgG가 흡수되는 효율을 설명하는 데 사용되는 용어입니다. 이는 흡수된 총 IgG의 척도가 아닙니다. 대신, 이는 24시간에 송아지의 혈액 시스템에 존재하는 대량 공급된 총 IgG의 비율을 효율적으로 측정한 것입니다. 초유 품질(IgG 농도), 첫 급이 시간, 급이 방법, 송아지 성별, 송아지 출산 체중, 송아지의 혈장량에 영향을 미치는 수화 상태 등 다양한 요인이 AEA에 영향을 미칩니다(Quigley et al., 1998; Godden et al. ., 2009b). 일반적으로 사용되는 AEA 공식은 다음과 같습니다. AEA={[출생 체중(kg) × 0.09 × 혈청 IgG(mg/mL 24시간)]/공급된 총 IgG(g)} × 100 [Quigley 및 Drewry(1998), Quigleyet al. (2002), Saldana et al. (2019)].
제시된 공식의 0.09 값은 갓 태어난 송아지의 추정 혈장량(출생 BW의 9%)을 설명합니다. 그러나 이 공식은 가정된 혈장 비율에 따라 달라집니다. 대부분의 연구는 Quigley 등이 사용한 9%에 의존합니다. (1998), 또 다른 연구에서는 9.9%(Fischer et al., 2018)와 7%(Halleran et al., 2017)를 사용했습니다.
Besseret al. (1991) 및 Davis와 Drackley(1998)는 SPI를 달성하려면 신생 송아지에게 최소 100g의 IgG를 공급해야 하지만 100g 또는 심지어 110g의 IgG를 공급한 송아지에서도 여전히 FPI를 경험할 수 있다고 언급했습니다. 결과적으로 IgG 100g의 최소값에 대한 추가 조사가 필요합니다. 예를 들어 Quigley et al. (2002)는 송아지에게 100g의 IgG를 공급하면(정상 범위 20~35%에서 가장 높은 값인 35% AEA를 갖는다고 가정; Quigley and Drewry, 1998), 혈청 IgG 농도는 9.7mg/mL이며, 이는 FPI를 결정하는 데 사용되는 컷오프인 10mg/mL보다 낮습니다. 결과적으로 Quigley et al. (2002)은 FPI를 예방하려면 신생아에게 최소 150~200g의 IgG를 제공해야 한다고 권장했습니다.
전반적으로, 갓 태어난 송아지를 적절하게 사육하려면 탁월한 초유 관리가 필요합니다. 초유 성분과 품질, 저장, 흡수 효율, 사료 공급 방법 등 다양한 요소를 고려해야 합니다. 송아지에게 적절한 양의 IgG가 공급되었는지 확인하려면 생후 24시간에 송아지의 혈청 IgG 농도를 직접 측정해야 합니다. 그러나 송아지에게 어미 초유를 먹일 때 적절할 수 있는 STP와 같은 IgG를 측정하는 간접적인 방법이 있습니다. 간접 방법은 CR을 먹인 송아지에게 서로 다른 컷오프 지점을 요구할 수 있습니다. STP 또는 혈청 IgG 두 가지 방법 모두 송아지가 초유 섭취 후 SPI 또는 FPI를 나타내는지 여부를 결정하는 서로 다른 차단점(각각 5.2 또는 5.5g/dL 및 10mg/mL)을 갖습니다. 초유는 50mg/mL 이상의 IgG 농도를 공급하고 출생 후 2시간 이내에 공급하는 것이 좋습니다. 이러한 빠른 수유는 출생 후 완전히 24시간 동안 발생하는 것으로 여겨지는 점진적인 투과성 폐쇄 전에 소장이 원하는 단백질을 흡수할 수 있도록 해줄 것입니다. 고품질 초유를 즉시 공급할 수 없는 경우 CR이 대체 사료가 될 수 있습니다. 그러나 이러한 대체 제품은 용량당 최소 100g의 IgG를 함유하고 산모의 표준 초유 공급을 완전히 대체해서는 안 되는 경우에만 대체 제품으로 간주될 수 있습니다.
요약
산모의 초유는 출생 시 신생아에게 반드시 공급되어야 하는 영양가가 높은 사료입니다. 이는 수동 전달을 통해 송아지의 면역체계를 발달시키는 단백질인 면역글로불린의 함량이 높습니다. 초유에는 다양한 유형의 면역글로불린이 있지만 면역 전달과 관련된 주요 면역글로불린은 IgG 클래스입니다. 송아지에게 적절한 양의 IgG가 공급되었는지 확인하려면 생후 24시간의 혈청 IgG 농도를 직접 측정해야 합니다. 송아지에게 초유를 먹일 때 적절할 수 있는 STP 또는 Brix %와 같은 IgG를 측정하는 간접적인 방법이 있습니다. 송아지에게 CR을 공급할 때 다양한 컷오프 지점이 필요할 수 있으며 혈청 IgG를 측정하는 것이 더 정확할 것입니다. IgG 농도와 박테리아 수준을 포함하는 초유 품질과 같은 요소는 24시간 동안 송아지의 혈류에서 발견되는 IgG의 양을 결정하는 데 도움이 됩니다. 초유는 50mg/mL 이상의 IgG 농도를 공급하고 출생 후 2시간 이내에 공급하는 것이 좋습니다. 이러한 빠른 공급으로 소장은 점진적인 투과성 폐쇄 전에 면역글로불린 단백질을 흡수할 수 있습니다. 완전한 폐쇄는 출생 후 24시간에 발생합니다. 고품질 초유를 즉시 공급할 수 없는 경우 CR이 대체 사료가 될 수 있습니다.
참고자료
Abuelo, A., F. Cullens, A. Hanes 및 JL Brester. 2021. 2대 1 초유 식사가 수동 면역 전달 실패, 이유 전 질병률 및 사망률, 대규모 젖소에서 젖소의 성적에 미치는 영향. 동물(바젤) 11:782. https://doi.org/10.3390/ani11030782.
Andrew, SM 2001. 홀스타인 암소의 초유 및 전이유 구성이 항생제 잔류 테스트의 특이성 비율에 미치는 영향. J. 유제품 과학. 84:100–106. https://doi.org/10.3168/jds.S0022 -0302(01)74457-8.
Barrington, GM, TE Besser, WC Davis, CC Gay, JJ Reeves 및 TB McFadden. 1997. 소 유방 상피 세포 및 유방 백혈구에 의한 면역글로불린 G1 수용체의 발현. J. 유제품 과학. 80:86–93. https://doi.org/10.3168/jds.S0022 -0302(97)75915-0.
배링턴, GM, SM 교구. 2001. 소 신생아 면역학. 수의사. 클린. 북쪽 오전. 푸드애니. 실습 17:463-476. https:/ /doi.org/10.1016/S0749-0720(15)30001-3.
Baumrucker, CR 및 RM Bruckmaier. 2014. 초유생성: IgG1 트랜스사이토시스 메커니즘. J. 유방샘 Biol. 신생물 19:103-117. https://doi.org/10.1007/s10911-013-9313-5.
Baumrucker, CR, AM Burkett, AL Magliaro-Macrina 및 CD Dechow. 2010. 초유생성: 면역글로불린 G1을 초유로 대량 이동. J. 유제품 과학. 93:3031~3038. https://doi.org/10 .3168/jds.2009-2963.
베서, TE, C. 게이, L. 프리쳇. 1991. 송아지에게 초유를 공급하는 세 가지 방법의 비교. J.Am. 수의사. 메드. 협회 198:419-422. Besser, TE 1993. 신생아 송아지의 장 내강에서 수동적으로 획득된 IgG1 항체의 농도. 수의사. 면역. 면역병리학. 38:103~112. https://doi.org/10.1016/0165 -2427(93)90116-L.
Besser, TE, AE Garmedia, TC McGuire 및 CC Gay. 1985. 송아지의 면역글로불린 흡수에 대한 초유 면역글로불린 G1 및 면역글로불린 M 농도의 영향. J. 유제품 과학. 68:2033~2037. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(85)81065 -1.
베서, TE, CC 게이. 1994. 신생아 송아지의 건강에 대한 초유의 중요성. 수의사. 클린. 북쪽 오전. 푸드애니. 실습 10:107~117. https://doi.org/10.1016/S0749-0720(15)30591 -0.
베서, TE, TC 맥과이어, CC 게이, LC 프리쳇. 1988. 기능성 면역글로불린 G(IgG) 항체를 위장관으로 전달하는 것은 송아지에서 IgG 제거를 설명합니다. J. 비롤. 62:2234-2237. https://doi.org/10.1128/jvi.62.7.2234-2237.1988.
베서, TE, D. 오스본. 1993. 신생 송아지로의 면역글로불린 G1의 수동 전달에 대한 소 혈청 알부민의 효과. 수의사. 면역. 면역병리학. 37:321-327. https://doi.org/10.1016/0165 -2427(93)90203-G.
Blättler, U., HM Hammon, C. Morel, C. Philipona, A. Rauprich, V. Romé, I. Le Huërou-Luron, P. Guilloteau 및 JW Blum. 2001. 사료 초유, 그 구성, 사료 공급 기간은 장의 증식과 형태, 신생아 송아지의 소화 효소 활동을 다양하게 변화시킵니다. J.Nutr. 131:1256~1263. https://doi.org/10.1093/jn/131.4.1256.
Blum, JW 및 CR Baumrucker. 2008. 우유의 인슐린 유사 성장 인자(IGF), IGF 결합 단백질 및 기타 내분비 인자: 신생아에서의 역할. 고급 특급. 메드. Biol. 606:397-422. https://doi.org/10.1007/978-0-387-74087-4_16.
브랜든, MR, DL 왓슨, AK 라셀레스. 1971. 면역글로불린을 소의 유방 분비물로 전달하는 메커니즘. 8월. J. 특급. Biol. 메드. 과학. 49:613–623. https://doi.org/10.1038/icb.1971.67.
브리뇰, TJ, GH 스토트. 1980. 면역글로불린 흡수 및 송아지 생존에 대한 젖먹이 후 초유 젖병 급식의 효과. J. 유제품 과학. 63:451-456. https://doi.org/10.3168/jds .S0022-0302(80)82952-3.
Broughton, CW 및 JG 레체. 1970. 다양한 사료를 먹인 새끼 돼지의 공장 상피에 대한 전자 현미경 연구. J.Nutr. 100:445~449. https://doi.org/10.1093/jn/100.4.445.
Buczinski, S., E. Gicquel, G. Fecteau, Y. Takwoingi, M. Chigerwe 및 J. Vandeweerd. 2018. 송아지의 수동 면역 전달이 부적절하다는 진단을 위한 혈청 굴절계 및 브릭스 굴절계의 진단 정확도에 대한 체계적인 검토 및 메타 분석. J. 수의사. 인턴. 메드. 32:474–483. https://doi.org/10.1111/jvim.14893.
불가리, O., AM Caroli, S. Chessa, R. Rizzi 및 C. Gigliotti. 2013. 우유 내 비타민 D의 변화와 -락토글로불린과의 상호작용. 분자 18:10122-10131. https://doi.org/10.3390/molecules180910122.
Burgstaller, J., T. Wittek 및 GW Smith. 2017. 초청 리뷰: 송아지의 복부 비우기와 위장 질환에 대한 잠재적 영향. J. 유제품 과학. 100:17~35. https://doi.org/10 .3168/jds.2016-10949.
부시, LJ, MA 아길레라, GD 아담스, EW 존스. 1971. 갓 태어난 송아지에 의한 초유 면역글로불린의 흡수. J. 유제품 과학. 54:1547~1549. https://doi.org/10.3168/jds.S0022 -0302(71)86063-0.
부시, LJ, TE 스탈리. 1980. 갓 태어난 송아지의 초유 면역글로불린 흡수. J. 유제품 과학. 63:672-680. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(80)82989-4.
버틀러, J., B. 라슨, V. 스미스. 1974. 수유 중 유방 분비물의 면역글로불린. 아이오와 주립대학교 출판부. 버틀러, JE 1969. 소 면역글로불린: 검토. J. 유제품 과학. 52:1895~1909. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(69)86871 -2.
Butler, JE 1983. 소 면역글로불린: 증강된 검토. 수의사. 면역. 면역병리학. 4:43~152. https://doi.org/10.1016/0165-2427(83)90056-9.
Cabral, RG, MA Cabral, CE Chapman, EJ Kent, DM Haines 및 PS Erickson. 2014. 초유 대체제 공급 요법, 중탄산나트륨 추가 및 우유 대체제: 신생아 송아지의 면역글로불린 G 흡수 효율에 대한 복합 효과. J. 유제품 과학. 97:2291~2296. https://doi.org/10.3168/jds.2013-7007.
Cabral, RG, CE Chapman 및 PS Erickson. 2013. 검토: 송아지용 초유 보충제 및 대체제. 애니 교수. 과학. 29:449-456. https://doi.org/10.15232/S1080-7446(15)30265-5.
Calloway, CD, JW Tyler, RK Tessman, D. Hostetler 및 J. Holle. 2002. 송아지의 수동 이동 상태를 평가하기 위한 혈청 단백질 농도 측정 시 굴절계 및 테스트 종점 비교. J.Am. 수의사. 메드. 협회 221:1605~1608. https://doi.org/10.2460/javma.2002.221.1605.
Chigerwe, M., JW Tyler, JR Middleton, JN Spain, JS Dill 및 BJ Steevens. 2008. 젖소의 초유 IgG 농도를 평가하는 4가지 방법 비교. J.Am. 수의사. 메드. 협회 233:761-766. https://doi.org/10.2460/javma.233.5.761.
Comline, RS, HE 로버츠 및 DA Titchen. 1951. 갓 태어난 동물의 초유 글로불린 흡수 경로. 자연 167:561-562. https://doi.org/10.1038/167561a0.
Constable, PD, W. Grünberg 및 L. Carstensen. 2009. 두 가지 경구 재수화 용액이 젖먹이 송아지의 젖 응고, 위 내강 pH 및 배위 배출 속도에 미치는 비교 효과. J. 유제품 과학. 92:296–312. https://doi.org/10.3168/jds.2008-1462.
Coons, DM, KA Thompson, N. Lamberskiand 및 M. Chigerwe. 2012. 스프링복 송아지의 혈청 IgG 측정을 위한 정량적 간접 ELISA 기반 방법. 국제 J. Appl. 결의안. 수의사. 메드. 10:142~146. Cruywagen, CW, GJ Brisson 및 HH Meissner. 1990. 어린 송아지의 카세인 응유 형성 능력 및 우유 대체 성분의 이상 보유. J. 유제품 과학. 73:1578~1585. https://doi .org/10.3168/jds.S0022-0302(90)78828-5.
커민스, C., DP 베리, JP 머피, I. 로렌츠, E. 케네디. 2017. 초유 저장 조건이 유제품 송아지 혈청 면역글로불린 G 농도와 이유 전 건강 및 성장률에 미치는 영향. J. 유제품 과학. 100:525~535. https://doi.org/10.3168/jds.2016-10892.
Cuttance, EL, W. Mason, R. Laven 및 C. Phyn. 2019. 뉴질랜드 목초지 기반의 계절 분만 낙농장에서 12개월~36-개월 된 암소의 수동적 이동 실패와 그에 따른 사망률, 체중 및 수유 성능 사이의 관계. 수의사. J. 251:105348. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2019.105348.
유제품 송아지 및 암소 협회. 2010. 골드 스탠다드. 2021년 7월 23일에 액세스함. http://haasnutrition.com/wp-content/uploads/ 2015/09/DCHA_GoldStandards_high-res_122016.pdf.
Davenport, DF, JD Quigley III, JE Martin, JA Holt 및 JD Arthington. 2000. 신생아 송아지의 IgG 흡수 시 초유 또는 초유 보충 제품에 카세인 또는 유청 단백질을 첨가합니다. J. 유제품 과학. 83:2813–2819. https://doi.org/10.3168/jds .S0022-0302(00)75180-0.
데이비스, CL, JK Drackley. 1998. 어린 송아지의 발달, 영양 및 관리. Vol. 에임스. 아이오와 주립대학교 출판부. Dawes, ME, JW Tyler, D. Hostetler, J. Lakritz 및 R. Tessman. 2002. 송아지의 수동적 전달의 적절성을 평가하기 위한 시판 면역분석법의 평가. J.Am. 수의사. 메드. 협회 220:791-793. https://doi.org/10.2460/javma.2002.220.791.
Deelen, SM, TL Ollivett, DM Haines 및 KE Leslie. 2014. 신생아 젖소의 혈청 면역글로불린 G 농도를 추정하기 위한 Brix 굴절계 평가. J. 유제품 과학. 97:3838-3844. https://doi.org/10.3168/jds.2014-7939.
DeNise, SK, JD 로비슨, GH Stott 및 DV 암스트롱. 1989. 낙농 암소의 후속 생산에 대한 수동 면역의 효과. J. 유제품 과학. 72:552-554. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(89)79140-2.
Desjardins-Morrissette, M., JK van Niekerk, D. Haines, T. Sugino, M. Oba 및 MA Steele. 2018. 갓 태어난 송아지의 면역글로불린 G 흡수, 복부 배출 및 혈장 호르몬 농도에 대한 튜브급식과 젖병급식 초유의 효과. J. 유제품 과학. 101:4168~4179. https://doi.org/10.3168/jds.2017 -13904.
Devery, JE, CL 데이비스, BL 라슨. 1979. 갓 태어난 송아지에서 면역글로불린 IgG1의 내인성 생산. J. 유제품 과학. 62:1814~1818. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(79)83504 -3.
Dewell, RD, LL Hungerford, JE Keen, WW Laegreid, DD Griffin, GP Rupp 및 DM Grotelueschen. 2006. 쇠고기 송아지의 건강 및 성능과 신생아 혈청 면역글로불린 G1 농도의 연관성. J.Am. 수의사. 메드. 협회 228:914–921. https://doi.org/10.2460/javma.228.6.914.
도노반, 조지아, IR Dohoo, DM Montgomery 및 FL Bennett. 1998. 미국 플로리다의 낙농 암소의 수동 면역과 질병률 및 사망률 사이의 연관성. 이전 수의사. 메드. 34:31~46. https://doi.org/10.1016/S0167-5877(97)00060-3.
Dunn, A., C. Duffy, A. Gordon, S. Morrison, A. Argűello, M. Welsh 및 B. Earley. 2018. 소 초유, 우유 및 송아지 혈청의 면역글로불린 G 정량화를 위한 단일 방사형 면역확산과 ELISA의 비교. J. Appl. 애니. 결의안. 46:758-765. https://doi.org/10.1080/09712119.2017.1394860.
Elizondo-Salazar, JA, BM Jayarao 및 AJ Heinrichs. 2010. 소 초유의 열처리가 박테리아 수, 점도 및 면역글로불린 G 농도에 미치는 영향. J. 유제품 과학. 93:961-967. https://doi.org/10.3168/jds.2009-2388.
Elizondo-Salazar, JA, CM Jones 및 AJ Heinrichs. 2011. 식도 공급기로 초유를 공급해도 신생아 유제품 송아지의 면역글로불린 G 흡수가 감소하지 않습니다. 애니 교수. 과학. 27:561~564. https://doi.org/10.15232/S1080-7446(15)30539-8.
Elsohaby, I., JT McClure, M. Cameron, LC Heider 및 GP Keefe. 2017. 소 초유 품질의 신속한 평가: 투과 적외선 분광법과 디지털 및 광학 굴절계는 얼마나 신뢰할 수 있습니까? J. 유제품 과학. 100:1427~1435. https://doi.org/10.3168/jds.2016-11824.
Elsohaby, I., JT McClure, LA Waite, M. Cameron, LC Heider 및 GP Keefe. 2019. 혈청 및 혈장 샘플을 사용하여 송아지의 수동 면역 전달 실패를 평가합니다. J. 유제품 과학. 102:567-577. https://doi.org/10.3168/jds.2018-15070.
파헤이, JL, EM 맥켈비. 1965. 항체-한천 플레이트에서 혈청 면역글로불린의 정량적 결정. J. Immunol. 94:84. Fischer, AJ, Y. Song, Z. He, DM Haines, LL Guan 및 MA Steele. 2018. 신생아 수컷 홀스타인 송아지의 수동적 전달 및 장내 세균 집락화에 대한 초유 공급 지연의 효과. J. 유제품 과학. 101:3099~3109. https://doi.org/10.3168/jds .2017-13397.
Fischer-Tlustos, AJ, K. Hertogs, JK van Niekerk, M. Nagorske, DM Haines 및 MA Steele. 2020. 수유 첫 주 동안 초산 및 다산 홀스타인 소의 초유, 전이유, 성숙유의 올리고당 농도. J. 유제품 과학. 103:3683-3695. https://doi.org/10.3168/jds.2019-17357.
폴리, JA 및 DE Otterby. 1978. 잉여 초유의 가용성, 저장, 처리, 구성 및 사료 가치: 검토. J. 유제품 과학. 61:1033-1060. https://doi.org/10.3168/jds.S0022 -0302(78)83686-8.
포스터, DM, GW 스미스, TR Sanner 및 GV Busso. 2006. 두 가지 초유 대체 제품을 먹인 젖소의 혈청 IgG 및 총 단백질 농도. J.Am. 수의사. 메드. 협회 229:1282~1285. https://doi.org/10.2460/javma.229.8.1282.
프레뇨, VL, JE 버틀러, RA 윌슨, J. Kavanagh. 1987. 소 IgM의 수송 및 대사. 몰. 면역. 24:207~219. https://doi.org/10.1016/0161-5890(87)90138-6.
Furman-Fratczak, K., A. Rzasa 및 T. Stefaniak. 2011. 암송아지 혈청의 초유 면역글로불린 농도가 건강과 성장에 미치는 영향. J. 유제품 과학. 94:5536–5543. https://doi.org/10.3168/jds.2010-3253.
겔싱어, SL, SM 그레이, CM 존스, AJ 하인리히스. 2014. 초유를 열처리하면 고, 중, 저품질 초유의 면역글로불린 G 흡수효율이 증가합니다. J. 유제품 과학. 97:2355–2360. https://doi.org/10.3168/jds.2013-7374.
겔싱어, SL, CM 존스, AJ 하인리히스. 2015. 초유 열처리 및 박테리아 개체수가 면역글로불린 G 흡수 및 신생아 송아지 건강에 미치는 영향. J. 유제품 과학. 98:4640~4645. https://doi.org/10.3168/jds.2014-8790.
Gelsinger, SL, AM Smith, CM Jones 및 AJ Heinrichs. 2015b. 기술 노트: 초유와 혈장 내 소 면역글로불린 G의 정량화를 위한 방사형 면역확산과 ELISA의 비교. J. 유제품 과학. 98:4084–4089. https://doi.org/10.3168/jds .2014-8491.
Godden, S. 2008. 젖소의 초유 관리. 수의사. 클린. 북쪽 오전. 푸드애니. 실습 24:19~39. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2007.10.005.
Godden, SM, DM Haines 및 D. Hagman. 2009a. 송아지에서 면역글로불린의 수동적 전달을 개선합니다. I: 상업용 초유 대체제 공급의 용량 효과. J. 유제품 과학. 92:1750~1757. https://doi.org/10.3168/jds.2008-1846.
