쥐에서 5-Fluorouracil 유도 위장관 점막염에 대한 Alpha-Lipoic Acid의 보호 효과 Part 2

Jul 05, 2023

3.5. 위, 소장 및 대장의 조직학적 평가

대조군과 ALA 그룹의 위 섹션에서 표면 상피 세포, 포베올라 위 섹션, 샘 상피 세포, 점막하층, 근육 및 장막층은 모두 정상이었습니다(그림 3a,b). 점막염 그룹에서 표면 상피 세포의 변성, 부종 및 광범위한 샘 확장이 관찰되었습니다(그림 3c). 상피 세포의 변성은 국소 병소로서 관찰되었다. 땀샘 사이의 경미한 충혈이 이 그룹의 피험자 중 한 명에게서 나타났습니다. 점막염 + ALA 그룹에서 상피 세포의 변성, 부종 및 샘 확대가 덜 분명한 것으로 관찰되었습니다 (그림 3d).

Cistanche의 배당체는 또한 심장 및 간 조직에서 SOD의 활성을 증가시킬 수 있으며 각 조직에서 리포푸신 및 MDA의 함량을 크게 감소시켜 다양한 활성 산소 라디칼(OH-, H₂O₂ 등)을 효과적으로 제거하고 이로 인한 DNA 손상으로부터 보호합니다. OH-라디칼에 의해. Cistanche phenylethanoid glycosides는 자유 라디칼의 강력한 소거 능력, 비타민 C보다 더 높은 환원 능력, 정자 현탁액에서 SOD의 활성을 개선하고 MDA 함량을 감소시키며 정자막 기능에 일정한 보호 효과가 있습니다. Cistanche 다당류는 D-갈락토스에 의해 유발된 실험적으로 노화된 쥐의 적혈구 및 폐 조직에서 SOD 및 GSH-Px의 활성을 향상시킬 수 있을 뿐만 아니라 폐 및 혈장의 MDA 및 콜라겐 함량을 감소시키고 엘라스틴 함량을 증가시킬 수 있습니다. DPPH에 대한 우수한 소거 효과, 노화된 쥐의 저산소증 시간 연장, 혈청 내 SOD 활성 개선, 실험적으로 노화된 쥐의 폐의 생리학적 퇴행 지연 피부 노화 질환을 예방하고 치료하는 약물이 될 가능성이 있습니다. 동시에 Cistanche의 echinacoside는 DPPH 자유 라디칼을 제거하는 상당한 능력을 가지고 있으며 활성 산소 종을 제거하고 자유 라디칼로 인한 콜라겐 분해를 방지하며 티민 자유 라디칼 음이온 손상에 대한 우수한 복구 효과도 있습니다.

cistanche supplement review

루콩롱 혜택 클릭

【자세한 정보:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

소장의 융모 높이를 정량화하기 위해 안구 마이크로미터를 사용했습니다. 점막염 그룹의 융모 길이는 다른 그룹에 비해 감소했지만 그룹 간에 통계적 차이는 발견되지 않았습니다(p > 0.05)(표 3). 튜니카 점막, 점막하층, 근육 및 장막층은 대조군 및 ALA 그룹의 소장에서 정상적인 조직학적 구조를 나타냈습니다(그림 4a,b). 점막염 그룹에서 융모의 불규칙성과 장 세포의 흘림이 관찰되었습니다 (그림 4c). 융모 불규칙성은 점막염과 ALA 그룹에서 감소한 것으로 나타났습니다(그림 4d).

대조군과 실험군 모두 대장의 구조적 변화는 관찰되지 않았다. 시각적으로 정상적인 단순 층상 원주 상피 세포, 잔 세포 및 땀샘이 관찰되었습니다 (그림 5a-d).

how to use cistanche

cistanche powder bulk

cistanche nutrilite

cistanche tubulosa adalah

4. 토론

암 발병률과 사망률은 인구 증가와 고령화, 주요 암 위험 요인의 유병률과 분포 변화를 반영하여 전 세계적으로 극적으로 증가하고 있으며, 그 중 다수는 사회경제적 발전과 관련이 있습니다[34,35]. 화학 요법은 몇 세기 전으로 거슬러 올라가지만, 체계적으로 암에 대한 화학 요법의 상당히 성공적이고 과학적으로 문서화된 최초의 사용은 1940년대까지 발생하지 않았습니다. 암에 적용된 최초의 성공적인 치료 방법은 신체 시스템에 대한 질소 머스타드의 독성 효과와 싸우는 경험을 기반으로 하며 나중에 암 환자의 치료에 사용되었습니다. 상당한 항종양 효과 후 빠른 종양 재발이 있었지만 처음에는 치료에서 긍정적인 결과로 나타났습니다. 이 경험은 악성 종양에 대한 화학 요법을 시작하는 단서가 된 것으로 나타났습니다[36].

5-FU는 1957년 처음 등장한 이래 항암제에 일반적으로 사용되었으며 결장암 치료에 중요한 역할을 했습니다. 또한 유방암, 두경부암과 같은 다른 악성 종양 환자에게도 활용됩니다[37]. 뉴클레오사이드 대사와 RNA 및 DNA로의 통합은 다양한 독성과 그에 따른 조직 손상을 초래합니다[38]. 항산화제-항산화제 불균형 유발, 사이토카인 수치 및 단백질 분해 효소 활성 증가, 궁극적으로 다양한 조직 손상 메커니즘 활성화와 같은 항대사제 5-FU의 독성 효과에 대한 다양한 메커니즘이 제안되었습니다[39,40 ].

5-FU와 같은 항암제는 SOD 및 GPx와 같은 항산화 효소 활동의 현저한 감소를 유발할 수 있을 뿐만 아니라 설프하이드릴 그룹과 같은 비효소 항산화제에 유해한 영향을 줄 수 있습니다. 이러한 결과는 5-FU 요법이 산화 불균형과 관련이 있다는 이전 연구를 완전히 뒷받침합니다[41-43]. 이전 연구의 증거는 산화 스트레스가 과도한 자유 라디칼 방출 및 ROS[44]를 통해 5-FU로 유발된 위장 손상의 병인에 책임이 있다고 보고했습니다. 이전 연구 결과에 따르면 산화 스트레스의 병리생리학은 5-FU[45-47]에 의한 과도한 자유 라디칼 방출과 ROS 위장관 손상에 의해 야기됩니다. 우리의 발견은 5-FU가 지질 과산화를 유발하고 결과적으로 세포막에 손상을 입히며 세포 SOD 및 GPx 항산화제의 고갈을 유발한다는 것을 보여줍니다. 이러한 결과는 이전 보고서[47–50]와 일치합니다. ALA의 가장 잘 알려진 활동은 산화 스트레스와 관련된 질병에 대한 가능한 치료 옵션으로 ALA의 사용을 촉진합니다. 또한, ALA는 위장 시스템을 보호하는 데 도움이 되는 항염증 특성을 갖는 것으로 알려져 있습니다. 우리 연구에서 5-FU 투여 후 MDA 수준이 위와 소장 및 대장에서 증가한 반면 SOD 및 GPx 활동은 감소했으며 이러한 변화는 ALA 요법으로 완화되었습니다. ALA는 산화 스트레스를 증가시키는 중금속을 제거하고 항산화 방어 시스템을 재건함으로써 위궤양뿐만 아니라 소장 및 대장에서 여러 모델에서 탁월한 항산화 특성을 나타내는 것으로 나타났습니다[51-54] .

cistanche tubulosa adalah

위와 장의 일반적인 구조의 높은 파괴율은 위장 점막염의 알려진 중요한 특징이며, 주로 장 융모의 파열 및 위축, 선와 구조의 손실, 위 상피 세포의 변성, 술잔 세포 비우기 증가 및 염증 세포의 침윤 [55]. 이것의 가장 눈에 띄는 특징은 일반적으로 점막 무결성의 악화와 융모 및 선와 매개변수의 변경입니다[56,57]. 이 연구에서 5-FU로 유발된 위장 점막염에 대한 ALA의 효과가 보고되었으며, ALA가 항종양제인 5-FU가 산화적 손상, 호중구 모집, 비만세포증, 술잔 세포 고갈, 조직학적 및 형태학적 변화. 우리의 결과는 이전 연구[17,58–60]에서 발견된 결과와도 호환됩니다. 치료 프로토콜에서 사용하는 ALA는 이전에 궤양 및 대장염 모델 모두에서 위장 조직에 보호 효과가 있는 것으로 나타났습니다[59,61,62]. 본 연구에서는 ALA를 투여한 군에서 위장관 점막 손상이 구조적으로 개선되었다.

이 연구는 염증성 사이토카인 IL-1 및 TNF-가 점막염 그룹의 혈청 및 조직(위, 소장 또는 대장)에서 증가됨을 보여주었습니다. 이전 연구에서는 5-FU 투여가 혈장 IL-1 및 TNF- 수준을 증가시킨다는 것을 입증했으며, 이는 우리의 혈장 발견과 일치합니다[63,64]. 그러나 우리는 위와 장 조직에서 이러한 사이토카인의 효과를 조사한 이전에 발표된 보고서를 찾을 수 없었습니다. 따라서, 우리의 연구 결과는 이러한 사이토카인의 효과가 전신적 효과뿐만 아니라 국소적 영향을 통해서도 구조적 손상에 기여한다는 것을 시사합니다. 점막염 쥐의 IL-1 및 TNF- 수준의 증가는 ALA 치료로 역전될 수 있음이 관찰되었습니다. 흥미롭게도 ALA는 현재까지 수행된 연구에서 혈장 사이토카인 생산만을 억제하는 것으로 나타났습니다[65,66]. 따라서, 혈장 사이토카인 수준뿐만 아니라 조직 사이토카인 수준을 억제하는 것이 점막염에 대한 ALA의 보호 활성의 근간을 이루는 중추적인 메커니즘을 나타내는 것으로 생각된다.

칼슘 의존성 아연 함유 효소의 MMP 계열의 5개 하위 그룹에는 콜라게나제, 스트로멜리신, 젤라티나제, 막형 MMP 및 기타 엔도펩티다제가 포함됩니다[67]. 이들은 상피, 간엽 및 조혈 세포에서 발현됩니다[68]. 특히 MMP-1, MMP-2, MMP-8 및 TIMP-1는 실험 및 임상 연구에서 염증에 영향을 미치는 것으로 입증되었습니다[69–71]. 우리의 연구는 5-FU에 의해 유도된 위장 점막염이 단백질 분해 효소 MMP-1, MMP-2, MMP-8 및 TIMP-1의 활성을 증가시킨다는 것을 입증했습니다. 혈청 및 조직에서. 따라서 분해되는 세포외기질 단백질, MMP 및 TIMP-1는 조직에 손상을 주며 위장관 점막염의 병리생리학에 중요합니다.

cistanche supplement

대조군 및 ALA 그룹과 비교하여 5-FU 처리는 혈청 및 조직에서 MMP-1, MMP-2, MMP-8 및 TIMP-1 활성화를 향상시켰습니다. 점막염 플러스 ALA 그룹에서. MMP-1, MMP-2, MMP-8 및 TIMP [72,73]의 발현 수준에 대한 ALA의 영향을 조사하기 위해 여러 염증 모델이 활용되었습니다. 염증 모델에서 ALA의 항염 및 항산화 효과는 MMP-1, MMP-2 및 MMP-8 발현을 낮추고 TIMP-1 활동 [74,75]. 26개의 인식된 MMP 중 몇몇은 염증성 질환 및 암에서 광범위하게 연구되었습니다. MMP-8 및 -9는 종양 세포 외에 섬유아세포 및 침윤성 염증 세포에 의해 발현되는 콜라게나제 MMP이다[76].

일부 연구에서는 TIMP-1 활성화가 MMP 활성화를 억제하여 보호 역할을 한다고 밝혔지만, 일부 다른 연구에서는 TIMP-1 활성화 증가가 전염증성 사이토카인 발현을 증가시켜 염증 반응을 일으킨다고 강조합니다[77,78]. 우리 연구에서 향상된 TIMP-1 활성화와 전염증성 사이토카인 생성 증가는 이러한 현상이 확인되었음을 의미합니다[79].

5. 결론

암에 대한 1차 치료로 종종 권장되는 화학요법은 부작용으로 인해 상당한 어려움을 겪고 있습니다. 5-유방, 결장, 직장, 위 및 췌장의 악성 종양을 치료하는 데 사용되는 FU는 위장 점막염을 유발하는 현저한 부작용이 있습니다. 따라서 이러한 부작용을 피하거나 줄이기 위해 화학요법제와 함께 제공될 수 있는 의약품의 사용이 중요하며 이 연구 분야는 아직 조사 중입니다. 우리는 연구에 ALA를 사용함으로써 이 분야의 지식 집합체에 기여했다고 생각합니다. 연구 결과 ALA와 5-FU의 조합이 항산화 균형과 함께 염증 조절과 관련된 매개변수에 유리한 변화를 유도한다는 사실을 발견했습니다. 우리의 연구 결과는 ALA를 5-FU 요법에 통합하는 것이 위장염이 있는 암 환자에게 잠재적인 옵션임을 나타냅니다.

저자 기여:DC: 개념화, 데이터 큐레이션, 조사, 방법론, 리소스, 작성 - 원본 초안 준비, 작성 - 검토 및 편집. A.O. ¸S.: 개념화, 데이터 큐레이션, 공식 분석, 자금 조달, 조사, 방법론, 프로젝트 관리, 감독, 시각화, 작성 - 원본 초안 준비, 작성 - 검토 및 편집. SG: 방법론, 리소스, 작성—검토 및 편집. KT: 개념화, 조사, 프로젝트 관리, 감독, 작성—검토 및 편집. H. ¸S.: 방법론, 자원, 저술—검토 및 편집. NG: 개념화, 방법론, 쓰기—검토 및 편집. SS: 개념화, 데이터 큐레이션, 공식 분석, 자금 조달, 조사, 방법론, 프로젝트 관리, 감독, 시각화, 쓰기 - 원본 초안 준비, 쓰기 - 검토 및 편집. 모든 저자는 원고의 출판된 버전을 읽고 이에 동의했습니다.

펀딩: 이 연구는 외부 자금 지원을 받지 않았습니다.

cistanche tablets benefits

기관 검토 위원회 성명서:이 연구는 헬싱키 선언에 의해 수행되었으며 이후의 수정 사항이 뒤따랐습니다. 동물 연구 프로토콜은 Near East University 지역 동물 실험 윤리 위원회(2019년 1월 17일 2019/01호 및 2020년 11월 27일 2020/11호)의 승인을 받았습니다.

정보에 입각한 동의서:적용되지 않습니다.

데이터 가용성 진술:이 연구 결과를 뒷받침하는 데이터는 합당한 요청 시 해당 작성자에게 제공됩니다.

이해 상충:저자는 이해 상충을 선언하지 않습니다.

참조

1. 로셰트, L.; Vergely, C. Alpha-Lipoic Acid - 심혈관 질환에 대한 보호 작용을 하는 항산화제. 자유 라디칼 및 산화 방지제의 시스템 생물학; Laher, I., Ed.; 스프링거: 베를린/하이델베르크, 독일, 2014; 1523~1536쪽.

2. 로셰트, L.; Ghibu, S.; Muresan, A.; Vergely, C. Alpha-Lipoic Acid: 당뇨병의 분자 메커니즘 및 치료 가능성. 할 수 있다. J. Physiol. 파마콜. 2015, 93, 1021–1027. [CrossRef] [펍메드]

3. Flora, SJS 금속 및 준금속 노출에 대한 전략을 위한 항산화제의 구조적, 화학적 및 생물학적 측면. 산화제 셀. 장수. 2009, 2, 191–206. [CrossRef] [펍메드]

4. 패커, L.; 로이, S.; Sen, CK - 리포산: 전사의 대사 항산화제 및 잠재적인 산화 환원 조절제. 약리학의 진보; Sies, H., Ed.; 학술 출판: Cambridge, MA, USA, 1996; 38권, 79–101쪽.

5. 패커, L.; 위트, EH; Tritschler, HJ Alpha-Lipoic Acid as a Biological Antioxidant. 자유 라디칼. 비올. 중간 1995, 19, 227–250. [교차 참조]

6. 패커, L.; Kraemer, K.; Rimbach, G. 당뇨병 합병증 예방에서 리포산의 분자적 측면. 영양 2001, 17, 888–895. [교차 참조]

7. 셰이, KP; 모로, RF; 스미스, EJ; 스미스, 아칸소; Hagen, 식이 보충제로서의 TM Alpha-Lipoic Acid: 분자 메커니즘 및 치료 가능성. 바이오킴. Biophys. Acta 2009, 1790, 1149–1160. [CrossRef] [펍메드]

8. Moungjaroen, J.; Nimmannit, U.; 캘러리, 추신; 왕, L.; 아자드, N.; Lipipun, V.; Chanvorachote, P.; Rojanasakul, Y. Reactive Oxygen Species는 Bcl-2 Down-Regulation을 통해 인간 폐 상피암 세포에서 Lipoic Acid에 의해 유도된 Caspase 활성화 및 Apoptosis를 중재합니다. J.Pharmacol. 특급 그. 2006, 319, 1062–1069. [교차 참조]

9. Dozio, E.; 루시카, M.; Passafaro, L.; Dogliotti, G.; 스테파니, L.; 파가니, A.; 데마티니, G.; Esposti, D.; 프라스키니, F.; Magni, P. 천연 항산화제인 Alpha-Lipoic Acid는 MCF-7 인간 유방암 세포에서 P27Kip1-의존 세포 주기 정지 및 세포사멸을 유도합니다. 유로. J.Pharmacol. 2010, 641, 29–34. [교차 참조]

10. Wenzel, U.; 니켈, A.; Daniel, H. -Lipoic Acid는 부수적인 O2-.-Generation으로 미토콘드리아 호흡을 증가시켜 인간 결장암 세포에서 세포 사멸을 유도합니다. Apoptosis 2005, 10, 359–368. [교차 참조]

11. 카이, X.; 첸, X.; 왕, X.; 쉬, C.; Guo, Q.; 주, L.; 주, S.; Xu, J. IPEC-J2 세포에서 H2O2에 의해 유발된 손상에 대한 리포산의 사전 보호 효과. 몰. 셀. 생화학. 2013, 378, 73–81. [교차 참조]

12. Bustamante, J.; 로지, JK; 마르코치, L.; 트리츨러, HJ; 패커, L.; Rihn, BH - 간 대사 및 질병의 리포산. 자유 라디칼. 비올. 중간 1998, 24, 1023–1039. [교차 참조]

13. Arpag, H.; 굴, M.; Aydemir, Y.; 아틸라, N.; 이기찬, B.; 카키르, T.; 폴라트, C.; ¸Sehirli, Ö.; Sayan, M. 쥐의 Methotrexate 유발 산화성 폐 손상에 대한 Alpha-Lipoic Acid의 보호 효과. J. 조사. 수술 2018, 31, 107–113. [CrossRef] [펍메드]

14. 차키르, T.; Ba¸stürk, A.; 폴라트, C.; Aslaner, A.; Durgut, H.; ¸Sehirli, A.Ö.; 굴, M.; Ö ˘günç, AV; 굴, S.; Sabuncuoglu, MZ; 외. 알파 리포산은 쥐의 메토트렉세이트 유발 산화 손상으로부터 간을 예방합니까? Acta Cir. 브래지어. 2015, 30, 247–252. [CrossRef] [펍메드]

15. Kermeo ˘glu, F.; 사이너, S.; ¸Sehirli, A.Ö.; 사브테킨, G.; Aksoy, U. -Lipoic Acid가 실험적으로 유발된 쥐의 급성 치수염에 치료적으로 효과적입니까? Aust. 엔도. J. 2022. [CrossRef] [PubMed]

16. Sehirli, A.; Aksoy, U.; 케르메오글루, F.; 칼렌더, A.; 사브테킨, G.; Ozkayalar, H.; Sayiner, S. 쥐의 정점 치주염 유발 심장 손상에 대한 알파 리포산의 보호 효과. 유로. J. 구술 과학. 2019, 127, 333–339. [CrossRef] [펍메드]

17. 모라, FA; 드 안드라데, KQ; 도스 산토스, JCF; Goulart, MOF Lipoic Acid: 항산화 및 항염증 역할과 임상적 응용. 현재 맨 위. 중간 화학. 2015, 15, 458–483. [교차 참조]

18. Aksoy, U.; 사브테킨, G.; ¸Sehirli, A.Ö.; Kermeo ˘glu, F.; 칼렌더, A.; Özkayalar, H.; 사이너, S.; Orhan, K. 실험적으로 유도된 치근단 치주염에 대한 Alpha-Lipoic Acid 요법의 효과: 생화학적, 조직병리학적 및 Micro-CT 분석. 국제 엔도. J. 2019, 52, 1317–1326. [교차 참조]

19. 엘 바키, A.; 후세인, S.; Mohamed, T. 강력한 항산화제 알파 리포산. J. Plant Chem. 에코피시올. 2017, 2, ID1016.

20. 브레이, F.; Laversanne, M.; Weiderpass, E.; Soerjomataram, I. 전 세계 조기 사망의 주요 원인으로서 암의 계속 증가하는 중요성. 암 2021, 127, 3029–3030. [교차 참조]

21. 엡스타인, JB; Thariat, J.; Bensadoun, R.-J.; 바라쉬, A.; 머피, BA; 콜닉, L.; Popplewell, L.; Maghami, E. 암 및 암 치료의 구강 합병증. CA Cancer J. Clin. 2012, 62, 400–422. [교차 참조]

22. Fauci, AS; 카스퍼, DL; 롱고, DL; Braunwald, E.; 하우저, SL; Jameson, JL Harrison's Internal Medicine, 17판. - AS Fauci, DL Kasper, DL Longo, E. Braunwald, SL Hauser, JL Jameson 및 J. Loscalzo 작성. 인턴. 중간 J. 2008, 38, 932. [교차 참조]

23. 스트링거, AM; 깁슨, RJ; 보웬, JM; 로건, RM; 예, ASJ; Keefe, DMK 화학 요법 유발 점막염: 내강 환경에서 위장관 미생물총과 뮤신의 역할. J. 지원. 온콜. 2007, 5, 259–267.

24. 독일 피터슨; Bensadoun, RJ; Roila, F. 구강 및 위장 점막염 관리: ESMO 임상 진료 지침. 앤. 온콜. 2011, 22(Suppl. S6), vi78–vi84. [CrossRef] [펍메드]

25. Chalabi-Dchar, M.; Fenouil, T.; 마천, C.; 빈센트, A.; 카테즈, F.; 마르셀, V.; 메르텐스, HC; Saurin, J.-C.; 부베, P.; Guitton, J.; 외. 오래된 약물에 대한 새로운 견해, 5-Fluorouracil: 암 세포 운명에 흥미로운 영향을 미치는 예기치 않은 RNA 수정자. NAR 암 2021, 3, zcab032. [CrossRef] [펍메드]

26. 메데이로스, ADC; Azevedo, Í.M.; 리마, ML; 필호, 아이오와; Moreira, MD 쥐의 5-Fluorouracil 유도 위장관 점막염에 대한 심바스타틴의 효과. 브라스 대령. Cir. 2018, 45, e1968. [교차 참조]

27. 무하, P.; Skoczy ´nska, A.; Małecka, M.; Hikisz, P.; Budzisz, E. 선택된 식물 화합물 및 금속 이온 복합체의 항산화 및 항염증 활동 개요. 분자 2021, 26, 4886. [CrossRef]

28. Sonis, ST Pathobiology of Mucositis. 세민. 온콜. 간호사. 2004, 20, 11–15. [교차 참조]

29. Benito-Miguel, M.; 블랑코, 메릴랜드; Gómez, C. HeLa 세포주에서 5-Fluorouracil-Loaded-ChitosanNanoparticles 및 ALA-Photodynamic Therapy의 순차적인 조합 평가. 광진단 Photodyn. 그. 2015, 12, 466–475. [교차 참조]

30. 되삼, B.; 괴더, A.; 시워트, N.; 카이나, B.; Fahrer, J. Lipoic Acid는 대장암 세포에서 P53-독립적인 세포 사멸을 유도하고 5-Fluorouracil의 세포 독성을 강화합니다. 아치. 독성. 2015, 89, 1829–1846. [교차 참조]

31. ¸Sehirli, Ö.; ¸Sener, E.; 체티넬, ¸S.; Yüksel, M.; Gedik, N.; ¸Sener, G. -리포산은 쥐의 신장 허혈-재관류 손상으로부터 보호합니다. 클린. 특급 파마콜. 피시올. 2008, 35, 249–255. [교차 참조]

32. ¸Sehirli, Ö.; Tatlidede, E.; Yüksel, M.; Erzik, C.; 체티넬, S.; Yeˇgen, B.Ç.; ¸Sener, G. 쥐의 에탄올 유발 위점막 미란에 대한 알파-리포산의 항산화 효과. 약리학 2008, 81, 173–180. [교차 참조]

33. Kim, SH; 전혜진; 최현성; 김예슬; 금비; 서예스; 진, YT; 이현식; 음, SH; Kim, CD Ursodeoxycholic Acid Attenuates 5-Fluorouracil 유발 점막염을 쥐 모델에서. 온콜. 레트 사람. 2018, 16, 2585–2590. [CrossRef] [펍메드]

34. Omran, AR The Epidemiologic Transition: A Theory of the Epidemiology of Population Change. Milbank Q. 2005, 83, 731–757. [CrossRef] [펍메드]

35. Gersten, O.; Wilmoth, JR 1951년 이후 일본의 암 전환. Demogr. 해상도 2002, 7, 271–306. [교차 참조]

36. Gilman, A. 질소 머스타드의 초기 임상 시험. 오전. J. Surg. 1963, 105, 574–578. [교차 참조]

37. Grem, JL 5-Fluorouracil: 40 이상 및 여전히 똑딱거리는. 전임상 및 임상 개발의 검토. 조사하다 N. Drugs 2000, 18, 299–313. [CrossRef] [펍메드]

38. Noordhuis, P.; Holwerda, U.; 반 데르 윌트, CL; 반 흐로닝언, CJ; Smid, K.; Meijer, S.; 피네도, HM; Peters, GJ 5-인간 결장직장암의 티미딜산 합성 효소 억제와 관련하여 RNA 및 DNA에 Fluorouracil 도입. 앤. 온콜. 2004, 15, 1025–1032. [교차 참조]

39. 와이어트, 메릴랜드; Wilson, DM 5-Fluorouracil에 대한 반응에서 DNA 복구 참여. 셀. 몰. 라이프 사이언스 2009, 66, 788–799. [교차 참조]

40. 케언즈, RA; 해리스, IS; Mak, TW 암세포 대사의 조절. Nat. Cancer 2011, 11, 85–95. [교차 참조]

41. 파니스, C.; 헤레라, ACSA; 빅토리노, VJ; 캄포스, FC; 프리타스, LF; 드 로시, T.; 콜로라도 시마오, AN; 세키니, 앨라배마; Cecchini, R. Paclitaxel 또는 Doxorubicin 화학 요법을 받은 진행성 유방암 환자의 산화 스트레스 및 혈액학적 프로필. 유방암 해상도. 대하다. 2012, 133, 89–97. [교차 참조]

42. Conklin, KA 자유 라디칼: 항산화제의 장단점 암 화학 요법 및 항산화제. J.Nutr. 2004, 134, 3201S–3204S. [교차 참조]

43. 헤스, JA; Khasawneh, MK Cancer Metabolism and Oxidative Stress: Methotrexate의 Non-Dihydrofolate Reductase 효과를 통한 발암 및 화학 요법에 대한 통찰력. BBA 클린. 2015, 3, 152–161. [CrossRef] [펍메드]

44. Yan, XX; 리, HL; 장윤태; 우, SY; 루, HL; 유, XL; 멩, FG; Sun, JH; Gong, LK A 새로운 재조합 MS-슈퍼옥사이드 디스뮤타아제는 마우스에서 5-Fluorouracil 유발 장 점막염을 완화합니다. 악타 파마콜. 죄. 2020, 41, 348–357. [CrossRef] [펍메드]

45. 나다난, RR; Abimosleh, SM; 수, YW; 매사추세츠주 셰러; 하워스, GS; Xian, CJ 식이 에뮤 오일 보충은 5-Fluorouracil 화학 요법 유발 염증, 파골 세포 형성 및 뼈 손실을 억제합니다. 오전. J. Physiol. 엔도크리놀. 메타브. 2012, 302, E1440–E1449. [CrossRef] [펍메드]

46. ​​라파, SF; Magliocca, G.; 페페, G.; 아모디오, G.; Autore, G.; Campiglia, P.; Marzocco, S. 인간 케라티노사이트에서 5-Fluorouracil에 의해 유도된 산화 스트레스 및 염증 반응에 대한 석류의 보호 효과. 항산화제 2021, 10, 203. [CrossRef]

47. 라시드, S.; 알리, N.; Nafees, S.; 하산, SK; Sultana, S. 5-Fluorouracil Induced Renal Toxicity by Chrysin via Targeting Oxidative Stress and Apoptosis in Wistar Rats의 완화. 식품화학 독성. 2014, 66, 185–193. [교차 참조]

48. 알헤나, N.; 칼리파, SAM; 잉, RPY; Hassandarvish, P.; Rouhollahi, E.; 알-와지, NS; 알리, HM; 매사추세츠주 압둘라; El-Seedi, HR 쥐 결장에서 Azoxymethane에 의해 유발된 이상 선와 병소에 대한 Strobilanthes Crispus 잎 추출물의 화학적 예방 효과. 과학. 2015, 5, srep13312. [교차 참조]

49. Kütük, SG; Nazıro ˘glu, M. 셀레늄은 마우스의 후두 기관 상피에서 도세탁셀 유도 세포 사멸, 산화 스트레스 및 염증을 감소시킵니다. 비올. 추적 요소. 해상도 2020, 196, 184–194. [교차 참조]

50. Ma, Z.; 쉬, L.; 리우, D.; 장 X.; 디, S.; 리, W.; 장제이; 라이터, RJ; 한제; 리, X.; 외. 멜라토닌을 활용하여 화학 요법의 부작용 완화: 노화에 따른 암 치료를 위한 잠재적으로 좋은 파트너. 산화. 중간 셀. 장수. 2020, 2020, 1–20. [교차 참조]

51. Bhattacharyya, A.; Chattopadhyay, R.; 미트라, S.; Crowe, SE 산화 스트레스: 위장 점막 질환의 병인에 필수적인 요소. 피시올. 2014, 94, 329–354. [교차 참조]

52. 카플란, KA; 오다바소글루, F.; 할리치, Z.; 할리치, M.; Cadirci, E.; Atalay, F.; Aydin, O.; Cakir, A. Alpha-Lipoic Acid는 항산화제 시스템을 조절하여 Indomethacin에 의해 유발된 위 산화 독성으로부터 보호합니다. J. 푸드 사이언스 2012, 77, H224–H230. [교차 참조]

53. Piechota-Polanczyk, A.; Zieli ´nska, M.; Piekielny, D.; Fichna, J. 급성 궤양성 대장염의 마우스 모델에서 카베올린-1-조절된 항산화 효소에 대한 리포산의 영향. 바이오메드. 약사. 2016, 84, 470–475. [CrossRef] [펍메드]

54. 박찬호; 윤홍수 ; 이재진 ; 이구유; 박진영; 고은호; Kim, H.-S. Nanocomminution으로 제조된 Lipoic Acid 입자에 의한 식욕억제 효능 향상. 약물 개발 공업제약 2009, 35, 1305–1311. [CrossRef] [펍메드]

55. Wei, L.; 왕제이; Yan, L.; 슈이, S.; 왕, L.; Zheng, W.; 리우, S.; 리우, C.; Zheng, L. Sulforaphane은 쥐의 5-Fluorouracil 유발 장 손상을 약화시킵니다. J. 기능. 식품 2020, 69, 103965. [CrossRef]

56. 이노마타, A.; 호리이, I.; Suzuki, K. 5-Fluorouracil 유발 장 독성: Murine Intestinal Crypt Epithelia에 대한 손상의 심각성을 결정하는 요인은 무엇입니까? 독성. 레트 사람. 2002, 133, 231–240. [교차 참조]

57. 코레나가, D.; 혼다, M.; M. 야스다; Inutsuka, S.; 노조에, T.; Tashiro, H. 장 투과성 증가는 쥐의 Fluorouracil 유사체 Tegafur 제제 중 위장 독성과 관련이 있습니다. 유로. 수술 해상도 2002, 34, 351–356. [CrossRef] [펍메드]

58. 팬, 피.; Tan, Y.; 진케이; 린, C.; Xia, S.; 한비; 장에프; 우, L.; Ma, X. 보충 리포산은 쥐의 장 투과성을 감소시켜 이유 후 설사를 완화합니다. J.애님. 피시올. 애님. 뉴트리 2017, 101, 136–146. [CrossRef] [펍메드]

59. 콜가지, M.; 야호빅, N.; Yüksel, M.; 에르칸, F.; Alican, I. -Lipoic Acid는 쥐의 Trinitrobenzene Sulfonic Acid에 의해 유도된 장 염증을 조절합니다. J. Gastroenterol. 헤파톨. 2007, 22, 1859–1865. [CrossRef] [펍메드]

60. 트리베디, PP; Jena, GB 생쥐의 Dextran Sulfate Sodium-Induced 궤양성 대장염에서 리포산의 역할: 염증, 산화 스트레스, DNA 손상 및 섬유증에 관한 연구. 식품화학 독성. 2013, 59, 339–355. [교차 참조]

61. 하산, A.; 이브라힘, A.; Mbodji, K.; Coëffier, M.; 지글러, F.; Bounoure, F.; 샤르디니, JM; 스키바, M.; 사부아, G.; Déchelotte, P.; 외. 리놀렌산이 풍부한 포뮬러는 TNBS 유발 대장염이 있는 쥐의 NF-KB를 조절하여 산화 스트레스와 염증을 줄입니다. J.Nutr. 2010, 140, 1714–1721. [교차 참조]

62. 고마, AMS; Abd El-Mottaleb, NA; Aamer, HA Alpha Lipoic Acid의 항산화 및 항염증 활성은 쥐의 Indomethacin 유발 위궤양을 예방합니다. 바이오메드. 약사. 2018, 101, 188–194. [교차 참조]

63. Curra, M.; 마틴스, MAT; 로센, IS; 펠리시올리, ACA; Sant'Ana Filho, M.; 파베시, VCS; 캐러드, VC; Martins, MD 햄스터의 5-Fluorouracil 유발 구강 점막염에서 IL-1 및 TNF-의 면역조직화학적 수준에 대한 국부 카모마일의 효과. 암 화학자. 파마콜. 2013, 71, 293–299. [CrossRef] [펍메드]

64. 아큐즈, C.; 야사르, NF; 우준, O.; 페커, KD; Sunamak, O.; Duman, M.; Sehirli, AO; Yol, S. 쥐의 화학 요법 후 결장 문합 치유에 대한 멜라토닌의 효과. 싱갑. 중간 J. 2018, 59, 545–549. [CrossRef] [펍메드]

65. ¸Sehirli, Ö.; 토잔, A.; 오무르탁, GZ; 세티넬, S.; Contuk, G.; Gedik, N.; ¸Sener, G. 마우스에서 나프탈렌 유발 산화 스트레스에 대한 레스베라트롤의 보호 효과. 에코톡시콜. 환경. 사프. 2008, 71, 301–308. [CrossRef] [펍메드]

66. ¸Sehirli, A.Ö.; Tatlidede, E.; Yüksel, M.; 체티넬, ¸S.; Erzik, C.; 예겐, B.; ¸Sener, G. TNBS 유발 대장염에서 산화적 손상에 대한 알파-리포산의 보호 효과. 에르시예스 메드. J. 2009, 31, 15–26.

67. 피타야프루엑, P.; Meephansan, J.; 프라파판, O.; 코미네, M.; Ohtsuki, M. 광노화 및 광발암에서 매트릭스 금속단백분해효소의 역할. 국제 J.Mol. 과학. 2016, 17, 868. [CrossRef] [펍메드]

68. 앨리슨, MR; 림, 에스.; Houghton, JM 골수 유래 세포 및 상피 종양: 단순한 염증 관계 이상. 현재 의견. 온콜. 2009, 21, 77–82. [교차 참조]

69. 첸 Q.; 진엠; 양에프; Zhu, J.; Xiao, Q.; Zhang, L. Matrix Metalloproteinases: 혈관 형성 및 리모델링에서 세포 행동의 염증 조절제. 중재자. 염증. 2013, 2013, 928315. [교차 참조]

70. 파이바, KBS; Granjeiro, JM Bone Tissue Remodeling 및 Development: Matrix Metalloproteinase 기능에 중점을 둡니다. 아치. 생화학. Biophys. 2014, 561, 74–87. [교차 참조]

71. 니시넨, L.; Kähäri, V.-M. 염증의 매트릭스 메탈로프로테이나제. 바이오킴. Biophys. Acta Gen. Subj. 2014, 1840, 2571–2580. [교차 참조]

72. Cavdar, Z.; 오즈발, S.; 셀릭, A.; 에르구르, BU; 구넬리, E.; 우랄, C.; Camsari, T.; Guner, GA 쥐 신장 허혈 및 재관류 모델에서 MMP-2 및 MMP-9 활성에 대한 알파-리포산의 효과. 생명 공학. Histochem. 2014, 89, 304–314. [교차 참조]

73. 칼칸, T.; Bintepe, C.; Yurekli, I.; Ersoy, N.; 바그리야닉, HA; Reel, B. Alpha Lipoic Acid는 인간 복재 정맥 이식편에서 산화 스트레스와 MMPS의 상향 조절을 억제합니다. 죽상경화증 2020, 315, e249. [교차 참조]

74. 샤르마, A.; 쿠마르, D.; 무어, RM; Deshmukh, A.; 머서, BM; 만수르, JM; Moore, JJ Granulocyte Macrophage Colony Stimulating Factor(GM-CSF), 염증 유발 태아막 약화의 중요한 중간체는 주로 양막보다는 맥락막 탈락막에 약화 효과를 나타냅니다. 태반 2020, 89, 1–7. [CrossRef] [펍메드]

75. 추, PS; 발로그, B.; 피니, AJ; 자켐, G.; 로지에, A.; 매사추세츠 아민; 워싱턴 주 스틴슨; Schiopu, E.; 칸나, D.; 폭스, DA; 외. 리포산은 경피증에서 역할을 합니다: 경피증 진피 섬유아세포에서 얻은 통찰력. 관절염 해상도. 그. 2014, 16, 411. [CrossRef] [PubMed]

76. Herszényi, L.; Hritz, I.; Lakatos, G.; 바르가, MZ; Tulassay, Z. 대장암에서 Matrix Metalloproteinases 및 억제제의 작용. 국제 J.Mol. 과학. 2012, 13, 13240–13263. [교차 참조]

77. Song, L.; Zhou, X.; 지아, HJ; Du, M.; 장, JL; Li, L. 인간 위암 조직의 HGC-MSC가 위암 종양 보유 마우스의 종양 조직에서 세포 증식, 침습 및 상피 중간엽 전이에 미치는 영향. 아시아 팩. J.트로프. 중간 2016, 9, 796–800. [교차 참조]

78. 나이트, BE; Kozlowski, N.; Havelin, J.; 킹, T.; 크로커, SJ; 영, EE; Baumbauer, KM TIMP-1는 MMP 의존 및 수용체 매개 세포 신호 메커니즘을 통해 염증성 통증의 발달을 약화시킵니다. 앞쪽. 몰. 신경과학 2019, 12, 220. [교차 참조]

79. 부그노, M.; Witek, B.; 베레타, J.; 베레타, M.; 에드워즈, DR; Kordula, T. 전 염증성 사이토 카인에 대한 반응으로 뇌 미세 혈관 내피 세포 및 성상 세포에서 TIMP-1 및 TIMP-3 발현 프로파일의 재프로그래밍. FEBS 레트. 1999, 448, 9–14. [교차 참조]


【자세한 정보:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

당신은 또한 좋아할지도 모릅니다