파트 2: Acteoside 및 그 유도체의 항산화 및 세포 보호: 비교 및 기계 화학
Mar 02, 2022
Xican Li 1,2,*,† ID, Yulu Xie 1,2,†, Ke Li 3,4, Aizhi Wu 1,2,*, Hong Xie 1,2, Qian Guo 1,5 Penghui Xue 1, Yerkingul Maleshibek 1, Wei Zhao 6, Jiasong Guo 7 및 Dongfeng Chen 3,
연락하다:joanna.jia@wecistanche.com
1 중국 한약학부, 광저우 중의약대학, 광저우 510006, 중국; xieyulu1900@163.com (YX); xiehongxh1@163.com (HX); 15622178307@163.com(QG); 15228738137@163.com (PX); pandiphd@163.com (YM)
2 광저우 중의과 대학 TCM의 혁신 연구 및 개발 연구실,
광저우 510006, 중국
3 광저우 중의과대학 기초의학부, 광저우 510006, 중국; ys1090992678@163.com(KL); chen888@gzucm.edu.cn (DC)
4 광주중의대학교 기초통합의학연구센터,
광저우 510006, 중국
5 중국 광저우 광동제약대학 기초의학부 510007
6 Zhongshan School of Medicine, Sun Yat-sen University, No. 74 Zhongshan Road. 2, 광저우 510080, 중국;
7 중국 남방 의과대학 조직학 및 발생학과, 광저우 510515;
Pls는 여기를 클릭하여 1부
4.3. PTIO·-소거 분석
PTIO·-소거 분석(pH 4.5 또는 pH 7.4)은 우리의 방법에 따라 수행되었습니다[16]. 간단히 말해서, 테스트 샘플 용액(x=0–2{11}} L, pH 4.5의 경우 1 mg/mL 및 pH 7.4의 경우 0.5 mg/mL)을 (20 x) 95% 에탄올 L, 이어서 80L의 PTIO·수용액. PTIO·수용액은 포스페이트-버터 용액(0.1mM, pH 4.5 또는 pH 7.4)을 사용하여 제조되었습니다. 혼합물을 37도에서 2시간 동안 유지한 후, 전술한 마이크로플레이트 리더를 사용하여 560 nm에서 흡광도를 측정하였다. PTIO·억제율은 다음과 같이 계산하였다:
여기서 A0는 시료가 없는 대조군의 흡광도이고 A는 시료가 있는 반응 혼합물의 흡광도입니다.
4.4. ABTS 플러스 ·-소거 및 DPPH ·-소거 분석
ABTS·+-소거 활성은 방법[37]에 따라 평가하였다. ABTS plus ·는 0.2mL의 ABTS 디암모늄 염(7.4mmol/L)과 0.2mL의 과황산칼륨(2.6mmol/L)을 혼합하여 생성되었습니다. 혼합물을 실온에서 12시간 동안 암소에서 보관하여 라디칼 생성을 완료한 후 증류수(약 1:20)로 희석하여 734 nm에서의 흡광도가 { {16}}.35 o 0.01 앞서 언급한 마이크로플레이트 판독기를 사용합니다. 소거 활성을 결정하기 위해 테스트 샘플(x=4-20 L, 0.05 mg/mL)을 (20 . x) L의 증류수에 첨가한 후 80 L의 ABTS plus · 시약을 첨가하고 흡광도 초기 혼합 후 3분 후에 증류수를 블랭크로 사용하여 734 nm에서 측정하였다.
DPPH· 라디칼 소거 활성은 이전에 설명한 대로 결정되었습니다[18]. 간단히 말해서, 75 L의 DPPH· 용액(0.1 M)을 메탄올에 용해된 표시된 농도의 샘플(0.025 mg/mL, 5–25 L)과 혼합했습니다. 혼합물을 실온에서 30분 동안 유지하고, 전술한 마이크로플레이트 리더를 사용하여 519 nm에서 흡광도를 측정하였다. ABTS + 소거 활성 및 DPPH 소거 활성의 백분율은 4.3절에 제시된 공식에 따라 계산되었습니다.
시스탄체피부 미백 기능이 있다
4.5. DPPH· 반응 생성물의 UPLC.ESI.Q.TOF.MS/MS 분석
이 방법은 이전 연구[25]를 기반으로 합니다. 의 메탄올 용액악티오사이드를 1:2의 몰비로 메탄올 중 DPPH·라디칼 용액과 혼합하고, 생성된 혼합물을 실온에서 24시간 동안 인큐베이션하였다. 그런 다음 생성물 혼합물을 0.{4}} m 필터를 통해 여과하고 C18 컬럼(2.{7}} mm id 土 10{ {13}} mm, 1.6m, Phenomenex, Torrance, CA, USA). 이동상은 시스템의 용출에 사용되었으며 메탄올(상 A)과 물(상 B)의 혼합물로 구성되었습니다. 컬럼은 다음과 같은 구배 용출 프로그램을 사용하여 0.3mL/min의 유속으로 용리되었습니다. 0–10분, 60–100% A; 10–15분, 100% A. 샘플 주입 부피는 다른 구성 요소의 분리를 위해 1L로 설정되었습니다. ESI-Q-TOF-MS/MS 분석은 음이온화 모드에서 실행되는 ESI 소스가 장착된 Triple TOF 5600 plus Mass spectrometer(AB SCIEX, Framingham, MA, USA)를 사용하여 수행되었습니다. 스캔 범위는 100–2000 Da로 설정되었습니다. 시스템은 다음 매개변수로 실행되었습니다: 이온 스프레이 전압, .4500V; 이온 소스 히터, 550도 ; 커튼 가스(CUR, N2), 30psi; 분무 가스(GS1, 공기), 50psi; 가스(GS2, 공기), 50psi. 디클러스터링 전위(DP)는 .100V로 설정한 반면 충돌 에너지(CE)는 .40V로 설정되었으며 충돌 에너지 확산(CES)은 20V였습니다. RAF 제품은 다음에서 해당 분자식을 추출하여 정량화되었습니다. 총 이온 크로마토그램(Suppl. 2).
포르시토사이드 B, 폴리우모사이드 및 카페산을 사용하여 전술한 실험을 반복하였다. 해당 m/z 피크는 총 이온 크로마토그램(Suppl. 2)의 해당 분자식에서 추출되었습니다.
4.6. Fe2 plus -킬레이트화 제품의 UV-Vis-Spectra 분석
Fe2+-킬레이트화 반응 생성물악티오사이드-Fe2 플러스는 UV-Vis-분광법을 사용하여 평가되었습니다[13]. 실험을 위해 300L의 메탄올 용액악티오사이드(0.24mM)을 700L의 FeCl2×4H2O(168mM) 수용액에 첨가하였다. 그 다음 용액을 격렬하게 혼합하였다. 그 후, 생성된 혼합물을 200-850 nm에서 한 시간 후에 UV-Vis 분광 광도계(Unico 2600A, Shanghai, China)를 사용하여 스캔했습니다. 대신에 포르시토사이드 B 또는 폴리우모사이드를 사용하여 앞서 언급한 실험을 반복했습니다.악티오사이드.
4.7. 과산화물 음이온(·O2.) 소거에 대한 피로갈롤 자가산화 분석
슈퍼옥사이드 음이온(·O2.) 소거 활성의 측정은 우리의 방법을 기반으로 하였다[17]. 간단히 말해서, 샘플을 1 mg/mL의 에탄올에 용해시켰다. 샘플 용액(×L)을 EDTA(1mM)를 함유하는 Tris-HCl 완충액(98{5}}·×L, 0.05M, pH 7.4)과 혼합하였다. 20L 피로갈롤(1mM HCl 중 60mM)을 첨가했을 때, 혼합물을 실온에서 즉시 진탕시켰다. 혼합물의 325 nm에서의 흡광도를 5분 동안 매 30초마다 블랭크로서 Tris-HCl 완충액에 대해 측정하였다(Unico 2100, Shanghai, China). ·O2. 소거 능력은 다음과 같이 계산되었습니다.
여기서, △A325nm, control은 시료가 없는 혼합물의 A325nm의 증분이고, △A325nm, 시료는 시료가 있는 혼합물의 A325nm의 증분이다. T=5분 실험 온도는 37℃였다.
4.8. 산화 스트레스를 받은 bmMSC에 대한 세포 보호 효과(MTT 분석)
bmMSC는 우리의 이전 보고서[38]에 따라 약간의 수정으로 배양되었습니다. 간단히 말해서, 골수는 쥐의 대퇴골과 경골에서 얻었습니다. 골수 샘플을 10% FBS를 포함하는 DMEM(저 포도당)으로 희석했습니다. bmMSC는 1.073g/mL Percoll에서 30분 동안 900g에서 구배 원심분리에 의해 제조되었습니다. 준비된 세포를 0.25% 트립신 처리하여 분리하고 1 土 104/cm2로 배양 플라스크에 통과시켰다. 계대 3의 bmMSC는 MTT 분석을 사용하여 CD44의 검출을 사용하여 배양된 세포 균질성에 대해 평가되었습니다[39].
MTT 분석을 사용하여 세포 보호 효과를 평가했습니다.악티오사이드및 bmMSC에 대한 파생물 [40]. 부상 모델은 선행 연구[41]를 기반으로 수립되었다. 실험 프로토콜은 그림 3에 간략하게 설명되어 있습니다.
시스탄체항산화에 피부 미백 효과
4.9. 통계 분석
섹션 4.2–4.4 및 4.7의 각 실험은 3회 수행되었으며 MTT 분석 실험은 5회 수행되었습니다. 데이터는 평균 o SD(표준 편차)로 기록되었습니다. 용량-반응 곡선은 Origin 6.{8}} 전문 소프트웨어(OriginLab, Northampton, MA, USA)를 사용하여 플로팅되었습니다. IC5{14}} 값은 5{15}}% 라디칼 억제(상대 환원력)의 최종 농도로 정의되었습니다[42]. 통계적 비교는 Windows용 SPSS 13.0(SPSS Inc., Chicago, IL, USA)을 사용하여 유의미한 차이를 탐지하기 위해 일원 분산 분석에 의해 이루어졌습니다. p < 0.05는="" 통계적으로="" 유의한="" 것으로="">
5. 결론
쓰리 내츄럴페닐프로파노이드배당체, 즉,악티오사이드, forsythoside B 및 poliumoside는 ET, H plus -transfer 및 Fe2 plus -chelating을 포함하여 항산화 작용을 발휘하는 여러 경로에 관여할 수 있지만 RAF는 그렇지 않습니다. ET 및 H 플러스 -전달 경로는 람노실 부분 또는 아피오실 부분에 의해 방해될 수 있습니다. 그러나 Fe2+-킬레이트화 경로는 당 잔기(특히 람노실 부분)에 의해 향상될 수 있습니다. 람노실 모이어티 또는 아피오실 모이어티의 일반적인 효과는 다중 경로 관련 ROS 소거 능력을 향상시키는 것입니다. 따라서 포르시토사이드 B와 폴리우모사이드는악티오사이드세포 보호 효과.
보충 자료: 보충 자료는 온라인에서 사용할 수 있습니다. 1. 용량-반응 곡선; 2. HPLC-MS 스펙트럼; 3. 분석인증서악티오사이드, 포르시토사이드 B, 및 폴리우모사이드.
감사의 말: 이 작업은 중국 국가 과학 재단(81573558, 81603269), 광동 과학 기술 프로젝트(2017A050506043) 및 광동성 자연 과학 재단(2017A030312009, 2015A030)의 지원을 받았습니다.
저자 공헌: Xican Li와 Dongfeng Chen이 실험을 구상하고 설계했습니다. Aizhi Wu는 폴리우모사이드를 준비했습니다. Yulu Xie, Qian Guo 및 Penghui Xue는 항산화 실험을 수행했습니다. Ke Li와 Wei Zhao는 MTT 실험을 수행했습니다. Hong Xie는 데이터를 분석했습니다. Jiasong Guo는 그림 2D의 실험을 수행했습니다. Xican Li가 논문을 작성했습니다. 모든 저자는 최종 원고를 읽고 승인했습니다.
이해 충돌: 저자는 이해 충돌을 선언하지 않습니다.
약어
ABTS 플러스 · 2,2→-and-bis(3-에틸벤젠-티아졸린-6-술폰산) 라디칼 bmMSCs 골수 유래 중간엽 줄기세포
항산화 능력을 감소시키는 CUPRAC 제2구리
dAMP 2'-데옥시아데노신-5'-모노포스페이트 라디칼 DMEM 둘베코 변형 이글 배지
dGMP 2'-데옥시구아노신-5'-모노포스페이트 라디칼 DPPH· 1,{5}}디페닐{6}}피크릴-히드라즐 라디칼
ET 전자 전달; FBS: 태아 소 혈청
FRAP 제2철 이온 환원 항산화력; HAT 수소 원자 이동
MTT 3-(4,5-디메틸티아졸-2-일)-2,5-디페닐 PCET 양성자 결합 전자 전달
PTIO· 2-페닐{1}},4,5,5-테트라메틸이미다졸린-1-옥실3-옥사이드 라디칼 RAF 라디칼 부가물 형성
ROS 활성산소종
SCNT 체세포 핵 이식
SEPT 순차 전자-양성자 이동
SPLET 순차 양성자 손실 단일 전자 전달 TPTZ 2,4,6-트리피리딜 트리아진
Trolox(o)-6-히드록실-2,5,7,8-테트라메틸크로만-2-카르복실산
시스탄체Acteoside는 항산화 및 노화 방지 효과가 있습니다.
참고문헌
1. Kubica, P.; Szopa, A.; Ekiert, H. 다양한 체외 조건에서 배양된 Verbena officinalis L.(vervain)의 바이오매스에서 verbascoside 및 페놀산 생산. Nat. 찌르다. 해상도 2017, 31, 1663-1668.
2. 이종현; 천제일; 김경주; 김에이; 김 DH; 이비엠; 한경우; 박, 캔사스; 이KB; 김엠케이 효과악티오사이드복제된 개를 생산하기 위한 세포 보호기. 플로스원 2016, 11, e0159330.
3. 왕, 본부; Xu, YX; 양제이; 자오, XY; 태양, XB; 장, YP; Guo, JC; 주, CQ악티오사이드-아밀로이드 유발 세포 손상으로부터 인간 신경모세포종 SH-SY5Y 세포를 보호합니다. 뇌 해상도 2009, 1283, 139–147.
4. 양정호; 얀, Y.; 류, HB; 왕, JH; Hu, JP의 보호 효과악티오사이드인간 피부 섬유아세포에서 X선 유발 손상에 대한 몰. 메드. 대표 2015, 12, 2301–2306.
5. 리우, CH; Liu, TS; 루오, CQ; Zhang, J.; 쩡, XY; Cui, L.; Xie, LJ Callicarpa kwangtungensis의 다른 기원과 부분에서 개나리 B와 폴리우모시드의 결정. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi 2013, 38, 3324–3326. [펍메드]
6. 장, WL; Tian, JW; 푸, FH; 주, HB; Hou, J. Forsythoside B의 신경 보호 효능 및 치료 창: 뇌 허혈 및 재관류 손상의 쥐 모델에서. 유로 J. Pharmacol. 2010, 640, 75–81. [교차 참조] [PubMed]
7. Pan, N.; Hori, H. 항산화 작용악티오사이드및 지질 과산화에 대한 유사체. 레독스 대표 1996, 2, 149–154.
8. Zheng, RL; 시이엠; 지아, ZJ; 자오, CY; Zhang, Q.; Tan, DNA 라디칼의 XR 빠른 복구. 화학 사회 개정판 2010, 39, 2827–2834.
9. 리, XC; 마이, WQ; Chen, DF Myricitrin의 Hydroxyl 유도 DNA 손상 및 항산화 메커니즘에 대한 보호 효과에 대한 화학 연구. J. 친. 화학 사회 2014, 61, 383–390.
10. 시와이엠; 왕, WF; 황, CY; 지아, ZJ; 야오, S.; Zheng, RL Phenylpropanoid 배당체 및 그 유사체에 의한 산화적 DNA 손상의 빠른 복구. 돌연변이 유발 2008, 23, 19–26.
11. Jiang, Q.; 리, XC; Tian, YG; 린, QQ; 시에, H.; 루, WB; 치,와이지; Chen, DF Mori Fructus 및 Mori Ramulus의 동결건조 수성 추출물은 ·OH 처리 손상으로부터 중간엽 줄기 세포를 보호합니다: 생물 분석 및 항산화 메커니즘. BMC 보완. 대체. 메드. 2017, 17, 242.
12. 왕, TT; 쩡, GC; 리, XC; Zeng, BMSC에서 H2O2-유도된 산화 스트레스에 대한 2-대체{2}}하이드록시퀴놀린 유도체의 항산화 및 보호 효과에 대한 HP 시험관 연구. 화학 바이올. 마약 데스. 2010, 75, 214–222.
13. Liu, JJ; 리, XC; 린, J.; 리, YR; 왕, TT; 장, Q.; Chen, DF Sarcandra Glabra(Caoshanhu)는 산화 스트레스로부터 중간엽 줄기 세포를 보호합니다: 생물 평가 및 기계 화학. BMC 보완. 대체. 메드. 2016, 16, 423.
14. 리, XC; 한엘; 리, YR; Zhang, J.; 첸, JM; 루, WB; 자오, XJ; 라이, YT; 첸, DF; Wei, G. 간엽 줄기 세포 및 가능한 메커니즘에 대한 Hydroxyl 라디칼 유도 손상에 대한 Sinapine의 보호 효과. 화학 제약 황소. 2016, 64, 319–325.
15. Bertolo, A.; 카포셀라, 에스.; Frankl, G.; 바우어, 엠.; Potzel, T.; Stoyanov, J. 산화 상태는 인간 중간엽 줄기 세포의 품질을 예측합니다. 줄기세포 해상도 거기. 2017, 8, 3.
16. Li, XC 2-페닐-4,4,5,5-테트라메틸이미다졸린-1-옥실 3-산화물(PTIO·) 라디칼 제거: 새롭고 간단한 시험관 내 항산화 분석. J. Agric. 식품화학 2017, 65, 6288–6297.
17. Li, X. 개선된 피로갈롤 자동산화 방법: 모든 항산화제에 적합한 신뢰할 수 있고 저렴한 과산화물 제거 분석법. J. Agric. 식품화학 2012, 60, 6418–6424.
18. 리, XC; 장, Q.; 왕, TT; Liu, JJ; Chen, DF Quercitrin과 Isoquercitrin의 항산화 효과 비교: 6→→-OH 그룹의 역할 이해. 분자 2016, 21, 1246.
19. Leopoldini, M.; 마리노, T.; Russo, N.; Toscano, M. 페놀 화합물의 항산화 특성: H-원자 대 전자 전달 메커니즘. J. Phys. 화학 2004, 108, 4916–4922.
20. 벤지, IFF 스트레인, JJ "항산화력"의 척도로서의 플라즈마(FRAP)의 철 환원 능력: FRAP 분석. 항문. 바이오켐. 1996, 239, 70–76.
21. Gulcin, I. 식품 성분의 항산화 활성: 개요. 아치. 톡시콜. 2012, 86, 345–391.
22. Goldstein, S.; Russo, A.; Samuni, A. PTIO 및 Carboxy-PTIO의 ·NO, ·NO2 및 O2의 반응. J. Biol. 화학 2003, 278, 50949–50955.
23. 리, X.; 한유진; 마이, WQ; Wang, L. 시험관 내 Tetrahydroamentoflavone의 항산화 활성 및 메커니즘. Nat. 찌르다. 통신 2013, 8, 787–789.
24. 장, HY 우, W.; Mo, ab 초기 수준에서 4개의 명시적 Diabatic 상태가 있는 PCET(Proton-Coupled Electron Transfer)에 대한 YR 연구. 계산 이론. 화학 2017, 1116, 50–58.
25. Lin, J.; 리, XC; 첸, 엘.; 루, WZ; 첸, XW; 한엘; Chen, [6]-gingerol의 Hydroxyl 라디칼 유도 DNA 손상 및 항산화 메커니즘에 대한 DF 보호 효과: 화학 연구. 황소. 한국화학. 사회 2014, 35, 1633–1638.
26. Iuga, C.; 알바레즈-아이다보이, JR; Russo, N. Hydroxyl 및 Hydroperoxyl Radicals에 대한 Trans-Resveratrol의 항산화 활성: 양자 화학 및 전산 동력학 연구. J. 조직. 화학 2012, 77, 3868–3877. [교차 참조] [PubMed]
27. 리, XC; Hu, QP; 장, SX; 리, F.; 린, J.; 한엘; 홍일영; 루, WB; 가오, YX; Chen, DF Flos Chrysanthemi Indici는 항산화 메커니즘을 통해 DNA 및 MSC에 대한 수산기 유발 손상으로부터 보호합니다. J. 사우디 화학. 사회 2015, 19, 454–460.
28. Amic, A.; Markovic, Z.; 마르코비치, JMD; 스테파닉, V.; 루시치, B.; Amic, D. 플라보노이드의 자유 라디칼 소거 효능 예측 개선: 이중 PCET 메커니즘의 중요성. 식품화학 2014, 152, 578–585.
29. 이창호; 윤진용 수용액에서 2,2→-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonate)(ABTS)의 UV 직접 광분해: 동역학 및 메커니즘. J. Photochem. 포토바이올. 2008, 197, 232–238.
30. Aliaga, C.; Lissi, EA Reaction of 2,2→-Azinobis(3-에틸벤조티아졸린-6-Sulfonic Acid(ABTS) Derived Radicals with Hydroperoxides. Kinetics and Mechanism. Int. J. Chem. Kinet. 1998, 30, 565 -570.
31. 오스만, AM; 웡, KKY; Fernyhough, A. 폴리페놀의 ABTS 라디칼 구동 산화: 공유 부가물의 분리 및 구조 설명. 바이오켐. 생물 물리학. 해상도 통신 2006, 346, 321–329.
32. Osman, AM Multiple Pathways of the Reaction of 2,2-Diphenyl-1-Picrylhydrazyl Radical(DPPH·) with ( plus )-catechin: DPPH·와 폴리페놀의 산화된 형태. 바이오켐. 생물 물리학. 해상도 통신 2011, 412, 473–478.
33. Lopez-Munguia, A.; Hernandez-Romero, Y.; Pedraza-Chaverri, J.; Miranda-Molina, A.; 레글라, 나.; Martinez, A.; Castillo, E. Phenylpropanoid Glycoside analogues: 효소 합성, 항산화 활성 및 자유 라디칼 제거 메커니즘의 이론적 연구. 플로스원 2011, 6, e20115.
34. 페론, NR; Brumaghim, JL 철 결합과 관련된 폴리페놀 화합물의 항산화 메커니즘 검토. 셀바이오켐. 생물 물리학. 2009, 53, 75–100.
35. 데보스, 디.; 모로, C.; Devedjian, JC; Kluza, J.; Perrault, M.; Laloux, C.; Jonneaux, A.; Ryckewert, G.; Garcon, G.; Rouaix, N.; et al. 파킨슨병의 치료 양식으로 킬레이트성 철을 표적으로 삼기. 항산화. 산화 환원 신호. 2014, 21, 195–210.
36. Cekic, SD; 바스칸, 캔사스; 토템, E.; Apak, R. 폴리페놀과의 혼합물에서 티올 함유 단백질의 항산화 능력을 측정하기 위한 수정된 구리 환원 항산화 능력(CUPRAC) 분석. Talanta 2009, 79, 344–351.
37. 리, XC; 첸, DF; 마이, Y.; 웬, B.; Wang, XZ 시험관 내 항산화 활성과 황기(황기)의 화학 성분 간의 일치. Nat. 찌르다. 해상도 2012, 26, 1050–1053.
38. 첸, DF; 리, XC; 쉬, ZW; 류, XB; 두, SH; 리, H.; 저우, JH; 쩡, HP; Hua, Buzhong Yiqi 달인의 ZC Hexadecanoic Acid는 골수 중간엽 줄기 세포의 증식을 유도합니다. J. Med. 식품 2010, 13, 967–975.
39. 리, X.; Liu, JJ; 린, J.; 왕, TT; 황정재; 린, YQ; Chen, DF ·OH-유도 중간엽 줄기세포 손상 및 기계적 화학에 대한 Dihydromyricetin의 보호 효과. 분자 2016, 21, 604.
40. 왕, GR; 리, XC; Zeng, HP Synthesis, (E)-9-p-Tolyl-3-2-(8-hydroxy-quinol- 2-yl)vinyl-carbazole 및 (E){{8 }}(p-아니실)-3-2-(8-하이드록시-퀴놀{13}}일)비닐-카바졸 및 중간엽 줄기 세포의 유도 증식. 액타 킴. 죄. 2009, 67, 974–982.
41. 리, X.; 웨이 G.; 왕, X.; 류 디.; Deng, R.; 리, H.; Zhou, J.; 리, Y.; Zeng, H.; Chen, D. atractylenolides에 의한 Shh 경로의 표적화는 중간엽 줄기 세포의 연골 분화를 촉진합니다. 바이올. 제약 황소. 2012, 35, 1328–1335.
리, XC; 가오, YX; 리, F.; 리앙, AF; 쉬, ZM; 바이, Y.; 마이, WQ; 한엘; Chen, DF Maclurin은 중간엽 줄기 세포에 대한 하이드록실 라디칼 유도 손상으로부터 보호합니다: 항산화 평가 및 기계론적 통찰력. 화학 바이올. 상호 작용합니다. 2014, 219, 221–228.
