쥐의 갱년기 증후군 모델에 대한 Cistanche의 페닐에타노이드 배당체
Mar 16, 2022
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ShuoTian, Mingsan Miao, MingBai, Zhenzhen Wei
Henan University of Chinese Medicine, Zhengzhou 450008, China 약리학과 2017년 5월 10일 온라인 제공
추상적인
Cistanche는 중국에서 2천년의 사용 역사를 가진 전통적이고 귀중한 중국 약초입니다. "사막 인삼"으로 알려진 신장을 튼튼하게 하고 간과 신장을 튼튼하게 하며 정액과 혈액을 보충하는 효과가 있습니다. 여기에서 우리는 의 메커니즘을 탐구했습니다.Cistanche의 페닐에타노이드 배당체(PGC)의 모델 마우스에갱년기 증후군, 뿐만 아니라 PGC의 치료 효과 및 특성갱년기 증후군. 이 연구에서 KM 마우스는 등의 양쪽 난소를 완전히 절제하여 재생산하여 난소의 모델 마우스를 확립했습니다.갱년기 증후군(MPS), 증류수 또는 약물을 각각 받았습니다. 모델 마우스는 증류수를 받았습니다. 마우스는 200 mg/(kg day) 고용량을 투여받았습니다.Cistanche의 페닐에타노이드 배당체(HPGC), 100 mg/(kg day) 중간 용량Cistanche의 페닐에타노이드 배당체(MPGC) 및 50 mg/(kg day) 저용량의Cistanche의 페닐에타노이드 배당체(LPGC). 21일 후에는 독립활동 횟수와 서 있는 횟수, 암실에 처음 들어가는 잠복기, 전기번호를 확인할 수 있다. 또한 자궁, 흉선, 비장의 내장 지수를 계산하고 혈청에서 에스트라디올(E2), 테스토스테론(T), 황체 형성 호르몬(LH) 및 난포 자극 호르몬(FSH) 수치를 측정했습니다. 또한, 쥐의 자궁, 흉선, 비장, 뇌하수체의 병리학적 변화를 관찰하였다. 그 결과 행동지표는 모델군(MG)에 비해 HPGC, MPGC, LPGC가 독립적인 활동을 증가시킬 수 있음을 보여주었다(P < 0.01).="" hpgc,="" mpgc는="" 입석="" 횟수,="" 암실="" 최초="" 진입="" 잠복="" 시간을="" 늘리고="" 전기="" 횟수를="" 줄일="" 수="" 있습니다(p="">< 0.01).="" lpgc는="" 입석="" 수를="" 늘릴="" 수="" 있습니다(p="">< 0.{13}}5).="" 내장="" 지수:="" mg,="" hpgc,="" mpgc와="" 비교하여="" mpgc는="" 자궁,="" 흉선,="" 비장의="" 내장="" 지수를="" 증가시킬="" 수="" 있습니다(p="">< 0.{19}}1).="" lpgc는="" 자궁의="" 내장="" 지수를="" 증가시킬="" 수="" 있습니다(p="">< 0.05).="" 혈청="" 지수:="" mg와="" 비교하여="" 모든="" 그룹이="" 혈청="" 내="" lh="" 수준을="" 감소시킬="" 수="" 있었습니다(p="">< 0.01).="" hpgc,="" mpgc는="" 혈청에서="" e2,="" t의="" 수준을="" 개선하고="" lh,="" fsh의="" 수준을="" 감소시킬="" 수="" 있습니다(p="">< 0.01).="" lpgc는="" e2="" 수준을="" 개선하고="" 혈청="" 내="" fsh="" 수준을="" 감소시킬="" 수="" 있습니다(p="">< 0.05).="" 한편,="" 혈청="" 내="" t="" 수치를="" 개선하는="" 경향이="" 있었습니다.="" 병리학적="" 변화:="" mg와="" 비교하여="" hpgc는="" 마우스의="" 자궁,="" 흉선,="" 비장="" 및="" 뇌하수체의="" 병리학적="" 변화를="" 유의하게="" 개선할="" 수="" 있습니다.="" 다른="" 그룹도="" 특정="" 효과가="" 있습니다.="" 결과는="" pgc가="" mps의="" 성호르몬="" 장애를="" 개선하고="" 자궁,="" 흉선="" 및="" 비장의="" 기능을="" 회복시켜="" mps에="" 대한="" 더="" 나은="" 치료="" 효과를="" 나타낼="" 수="" 있음을="">
그래픽 요약
키워드: PGC;갱년기 증후군; 쥐
약어
MPS갱년기 증후군PGCCistanche의 폴리에틸렌 배당체HPGC고용량Cistanche의 페닐에타노이드 배당체MPGCCistanche의 페닐에타노이드 배당체의 중간 용량LPGC낮은 용량의Cistanche의 페닐에타노이드 배당체테스토스테론E2에스트라디올LH황체형성호르몬 난포자극호르몬
갱년기 증후군에 대한 Cistanche의 페닐에타노이드 배당체
1. 소개
시스탄체, Cistanche Deserticola YC Ma 및 C. tubulosa (Schrenk) Wight(Chen et al., 2013)의 비늘 잎이 있는 말린 다육질 줄기는 수천 년 동안 널리 사용되는 유명한 약물입니다. "Shen Nong's Herbal Classic"(Liu et al., 2013)에서 유래한 것으로 맛은 짠맛, 성질은 따뜻합니다. 신장을 튼튼하게 하는 효능이 있고, 간과 신장을 튼튼하게 하며, 진액과 혈액을 보충하고, 장을 촉촉하게 하여 변비를 완화하는 등의 효능이 있습니다. 주로 신양(腎陽)의 결핍(발기부전), 정자의 차가움, 정자의 찬, 자궁의 냉증, 변비, 야뇨증, 배뇨빈도 등의 질병에 사용한다. 현대 연구에 따르면 노화 방지, 항염증, 항 피로 및 기타 효과로 인간의 면역, 기억 및 학습 능력을 향상시킬 수 있습니다(Li et al., 2010, Rashid et al., 2017).
MPS는 에스트로겐 분비 장애로 인한 자율신경계 기능장애 장애의 증후군으로 신경정신과적 증상을 동반한다. 안면홍조, 과민성, 현기증, 이명, 심계항진, 불면증 등의 정도가 다르며, 후기에는 골다공증, 기억상실, 인지장애, 심혈관계 및 뇌혈관질환이 뚜렷하다. 주된 이유는 난소 기능의 점진적인 쇠퇴와 소멸입니다(Ia, 2016). 현재, MPS의 치료를 위한 호르몬 대체 요법(HRT)의 주요 용도, 에스트로겐 직접 보충, 장기간 HRT는 질 출혈, 유방 압통, 자궁내막암, 유방암 및 기타 부작용을 유발할 수 있습니다. 또한, 효과는 아직 만족스럽지 않습니다. 면역계에 대한 에스트로겐의 투여량은 여전히 억제 효과가 있습니다(Ma et al., 2016, Nawaz et al., 2017). 특히 최근의 발견은 심혈관 및 뇌혈관 질환의 위험을 증가시킬 수 있고 임상 적용을 크게 제한하는 기타 심각한 부작용을 나타낼 수 있음을 보여줍니다. 긴급한 시장 수요에서 MPS 약물의 치료를 찾는 한의학(TCM)에 대한 관심이 점점 더 커지고 있습니다(Halim and Phang, 2017, Mustafa et al., 2017). TCM은 시상하부-뇌하수체-난소축(HPOA), 난소 기능 회복 및 난소 노화 지연을 조절함으로써 오랜 역사를 가진 MPS를 치료합니다(Zhang and Miao, 2011). 대부분의 신장양 약물은 MPS에 더 나은 치료 효과가 있는 것으로 밝혀졌습니다(Wei and Miao, 2013).
시스탄체과거 왕조에서 신장 양을 보충하는 약물의 가장 높은 빈도입니다(Tu et al., 2011). 의 주요 유효 성분시스탄체안드로겐 효과가 있는 페닐에타노이드 배당체입니다. 그것은 Cistanche(Yan et al., 2012)에서 활성 성분이 가장 높은 현대 의학의 신장 양(Zhao and Pan, 2013)의 구현입니다. 주로 두 가지 방식으로 작동합니다(Wumaierjiang and Yao, 2016). 첫째, 시상하부-뇌하수체-부신 기능을 강화하고 신체의 신경 전달 물질과 호르몬의 방출을 촉진하는 기능이 있습니다. 둘째, 신체 기능을 향상시키는 피로 방지 기능이 있습니다. 씨스탄체의 신장보충 효과는 Epimedium brevicornum Maxim, Morinda officinalis How 등의 일반 신장약과 다릅니다.시스탄체음(陰)을 해치지 않고 신장(腎臟)을 보한다. 장기간 사용시 공평함, 구강건조 등의 증상이 나타나지 않습니다.
2. 재료 및 방법
2.1. 재료 및 시약
시스탄체(Batch No.20130501)은 Anhui, Dechan Pharmaceutical Pieces Co., Ltd.에서 구입했습니다. 샘플은 Chen Suiqing 교수(Henan University of Chinese Medicine, 중국 약학 분야 식별)에 의해 비늘 모양의 잎이 있는 말린 다육질 줄기로 확인되었습니다.시스탄체데저티콜라Y. C. Ma 및 C. tubulosa (Schrenk) Wight의 비늘 모양의 잎이 있는 말린 다육질 줄기. GC(배치 번호 120303)는 Shanxi star Pharmaceutical Co., Ltd.에서 제공했습니다. Echinacoside 참조 물질(Batch No.{1}})은 National Institute for Control of Pharmaceutical and Biological Products에서 제공했습니다. AB-8 거대다공성 흡수 수지(Batch No.20130618)는 Tianjin Guangfu of Superfine Chemical Industry에서 공급받았습니다. 나트륨 카르복시메틸 셀룰로오스(Batch No.20120418, Tianjin Hengxing Chemical Reagent Co., Ltd.), 벤질페니실린 주사용 나트륨(Batch No.c1206807, North China Pharmaceutical Co., Ltd., 사양: 400만 단위), 0.9% 나트륨 Chloride Injection (Batch No.1301265303, Chen Xin Pharmaceutical Co., Ltd; 사양: 250 ml), Chloral hydrate (Batch No.20120827, Tianjin Institute of Fine Chemical Industry), E2 ELISA assay kit (Batch No.20131001A, R&D Systems 중국), T ELISA 분석 키트(Batch No.20131001A, R&D Systems China), LH ELISA 분석 키트(Batch No. 20131001A, R&D Systems China), FSH ELISA 분석 키트(Batch No. 20131001A, R&D Systems China).
2.2. 샘플 준비
2.2.1. 준비 방법
샘플 준비 절차는 다음과 같습니다. 문헌 방법(Gu et al., 2011)에 따라 Feng Suxiang(허난 중의과 대학 약학 분석 과정 학과)의 지도 하에 있었습니다. 그만큼시스탄체가루로 분쇄하여 에틸알코올의 양으로 2번 추출하는 환류추출법(에틸알코올의 함량은 70%임). 환류 추출 시간은 1.5시간 1회, 알코올 추출액을 2회 합하였다. 추출액은 알코올 향이 없이 감압 농축하였으며, 증류수를 이용하여 분산시켰다(농도는 시료용액으로 0.5g/ml이다. 시료용액은 AB{7}} 수지에 유동적으로 설치하였다. (시료와 수지의 비율은 1:10임), 5시간 동안 방치한 후 시료용액이 완전히 흡착될 때까지 방치한 다음, 먼저 컬럼 부피의 10배의 증류수로 AB를 세척합니다.{12} } 레진을 시료용액과 함께 물에 방치하고 두 번째로 에틸알코올의 컬럼 부피의 10배(에틸알코올의 함량은 10%)로 불순물을 제거하고 세 번째로 7배의 에틸알코올로 에틸알코올의 컬럼 부피(에틸알코올의 함량은 60%)까지 용출, 우리는 용출액을 수집하고 용출액, 즉 분말Cistanche의 페닐에타노이드 배당체.
갱년기 증후군에 대한 Cistanche의 페닐에타노이드 배당체
2.2.2. 결정 파장의 선택
{0}}.5mL 대조 제품 용액을 선택하고 대조 제품에 5% 아질산나트륨 용액 1mL를 추가합니다. 그런 다음 6분 동안 흔들고 조용한 장소를 유지합니다. 그 후, 위의 혼합물에 10% 질산알루미늄 용액을 첨가한다. 그런 다음 6분 동안 흔들어서 조용한 장소를 유지합니다. 상기 혼합물에 10% 수산화나트륨 10mL를 첨가하고, 혼합물의 부피를 물로 25mL로 고정하였다. 대조 제품 용액으로 18분 동안 흔들고 조용한 장소에 두십시오. 0.5mL 선택Cistanche의 페닐에타노이드 배당체위의 방법 구성과 같은 솔루션을 테스트 솔루션으로 사용합니다. 공시료는 위의 방법 구성과 같이 대조 생성물 용액과 검액을 제외한 공시액이었다. 200-800 nm 파장 범위의 UV 분광 광도계에서 전체 파장을 사용하여 위의 3가지 용액을 스캔했습니다. 대조 생성물 용액과 시료 용액은 507 nm에서 최대 흡수 피크를 나타내므로 507 nm의 파장을 흡수 파장으로 결정하였다.
후Cistanche의 페닐에타노이드 배당체용액 (1) 및 Echinacoside 참조 물질 (2) (중첩 대조), 색상이 나타남 (다음 그림 참조)
2.2.3. 콘텐츠 감지 방법
용액이 결정될 때까지 1mL를 정밀하게 달아 대조품에 5% 아질산나트륨용액 1mL를 가하고 6분간 흔들어 섞는다. 그런 다음 위의 혼합물에 10% 질산알루미늄 용액을 추가합니다. 흔들어서 6분 동안 조용히 둡니다. 상기 혼합물에 10% 수산화나트륨 10mL를 첨가하고, 혼합물의 부피를 물로 25mL로 고정하였다. 18분 동안 동요하고 조용한 장소; 블랭크 용액은 샘플 용액이 없는 블랭크 샘플과 동일한 방법으로 제조하였다. UV 분광 광도계로 507 nm의 분광 광도계에서 결정합니다.
2.2.4. 방법론 시험
2.2.4.1. 대조액 및 검액의 조제
대조액의 조제: 3.{4}}에키나코사이드 6 mg을 표준물질로 하여 항량이 될 때까지 건조하여 정밀히 달아 25 mL의 메스플라스크에 넣는다. 그런 다음 눈금까지 희석한 70% 에탄올 용액을 사용하고 혼합액을 흔들어 대조액으로 한다. 대조군 용액의 함량은 0.1224 mg/ml이었다.
시료 용액의 조제: 정밀 중량 5 mgCistanche의 페닐에타노이드 배당체10mL의 메스플라스크에 넣는다. 그 다음 눈금까지 희석한 70% 에탄올용액을 사용하고 흔들어 섞은 것을 검액으로 한다.
2.2.4.2. 표준 곡선의 준비
{{0}}, 1.0, 2.0, 3.0, 4.{{1{12}}의 제어 솔루션을 정확하게 그립니다. }}, 5.{15}} 및 6.0mL를 "결정파장선정"에 따라 흡광도를 측정하였다. 흡광도에 대한 농도를 사용하여 회귀 방정식을 얻었습니다. Y=20.296X - 0.0015(r=0.9994), 선형 범위는 4.90–29.4 ug/ml입니다.
2.2.4.3. 정밀 테스트
Parallel은 "함량검출방법" 항목에 따라 검액의 흡광도를 6회 측정하였다. 흡광도의 상대표준편차를 계산한 결과 흡광도는 0.299, 0.299, 0.298, 0.297, 0 .297 및 0.297, 평균 흡광도는 0.298, RSD=0.330%(n=6).
2.2.4.4. 안정성 테스트
에 따라 {{0}}, 15, 30, 50, 60분 동안 용액이 완전히 착색된 후 샘플 용액의 흡광도를 결정합니다. "콘텐츠 탐지 방법" 항목입니다. 흡광도의 상대표준편차를 계산한 결과 흡광도는 0.300, 0.296, 0.295, 0.295였으며 평균 흡광도는 0.299였으며 RSD는=1.362%(n {{17 }}).
갱년기 증후군에 대한 Cistanche의 페닐에타노이드 배당체
2.2.4.5. 반복 테스트
"시료의 조제" 항목에 따라 검액 6개를 준비하고, "함량검출방법"의 항목에 따라 흡광도 및 함량을 계산한다. 함량은 각각 65.2%, 65.6%, 66.7%, 67.2%, 66.5%였으며 평균 함량은 66.2%, RSD=1.142%(n=6)였다.
2.2.4.6. 샘플 회수율 테스트
함량이 알려진 시료 용액 9개를 정밀 칭량하고 각 조각은 0.5 mL였습니다. 검액에 표준용액 200, 250, 300 ul를 각각 넣는다. 회수율과 상대표준편차를 계산한다.Cistanche의 페닐에타노이드 배당체회수율은 101.45%, 99.26%, 98.94%, 101.83%, 99.05%, 99.47%, 98.72%, 99.17%, 100.64%였다. 평균 복구율은 99.84%였으며 RSD는=1.164%(n=9)였습니다.
2.2.5. 샘플 내용의 결정
"시료 조제" 항목에 따라 3가지 시액을 준비한다. 그 후 507 nm의 분광광도법에서 "함량검출방법" 항목에 따라 흡광도를 구하여 함량을 구한다. 결과를 표 1에 나타내었다.
표 1. 결과Cistanche의 페닐에타노이드 배당체콘텐츠.
2.3. 실험 동물
KM 암컷 마우스(20-25g)는 무한 생물 제품 연구소에서 구입했습니다. 동물 허가 번호: 42000400000611, 실험실 인증 번호 SYXK(허난) 2010-001.
2.4. 실험기구
고속 탁상 원심 분리기, 상하이 Anting 과학 기기 공장, 모델: TGL-168; 전자 분석 저울, Ohaus(Shanghai), 모델: AR1140/C; 쥐 자율 활동 테스트 기기, Chengdu Taming Science and Technology Limited Company, 모델: ZZ-6; 마우스 다크 기기, Chengdu Taming Technology Co., Ltd., 모델: BA-200; 효소 표지 기기, USA BIO-RAD, 모델: 680; 전기 현미경, 일본 OLYMPUS Company, 모델: BX61.
2.5. 실험 동물 모델
100 KM 마우스(23–25g)의 체중을 재고 10% 염소 알데히드 수화물(0.03mL/10g)을 복강 내 주사하고 마취 후 복부를 고정했습니다. 12마리의 마우스를 무작위로 무작위 대조군(BC)으로 선택하여 가짜 수술을 하였다. 다른 것들은 MPS 모델로 수행되었습니다. 마우스의 마지막 갈비뼈 뒤에서 겨드랑이 라인의 교차점과 측면 척추에서 약 1cm 거리의 교차점에서 마우스 머리카락을 전단합니다. 소독 후 피부와 등 근육을 약 0.5~1cm 열어보니 절개한 시야에서 유백색의 지방덩어리가 발견되었고 난소가 지방에 박혀 있었습니다. 핀셋으로 절개 부위의 지방을 살살 빼내고 지방을 분리하면 가는 실이 불규칙한 황적색 난소를 발견할 수 있습니다. 먼저, 난소는 나팔관(지방 포함) 아래에 가는 철사로 결찰된 후, 난소를 제거하였다. 수술 후 자궁을 복강으로 다시 넣었습니다. 근육과 피부를 꿰매고 같은 방법으로 양측 난소를 제거하였다. 수술 후 주의사항, 감염시 페니실린 200,000 U/kg을 1일 1회 3일간 근육주사한다. 5일 동안의 수술 후 난소가 완전히 제거되었는지 확인하기 위해 5일 동안 하루에 한 번 마우스 질 도말검사를 시행하였다.
2.6. 실험적 그룹화
발정기를 가진 생쥐는 질 도말검사에 의해 버려졌고 완전히 거세된 72마리의 생쥐를 무작위로 5개 군(군당 n{1}}), 즉 모델군(MG), GC, HPGC, MPGC 및 LPGC.
2.7. 분배 방법
{{0}}.5% CMC: 나트륨 카르복시메틸 셀룰로오스 4g, 증류수는 800ml입니다. HPGC, MPGC 및 LPGC의 약물 용량은 각각 200, 100 및 50 mg/kg이었습니다(투여 부피: 0.1 ml/10 g). 2000 mg, 1000 mg 및 500 mg의 PGC를 칭량하고 소량의 0.5% CMC로 용해합니다. 그런 다음 부피를 100ml로 설정하고 현탁액을 혼합합니다. GC의 약물 용량은 675 mg/kg이었고, GC 9개 알약은 0.5% CMC의 소량으로 용해되었습니다. 그런 다음 부피를 40 ml로 설정하고 현탁액을 혼합합니다.
2.8. 약물 투여
각 그룹의 동물은 수술 후 1{5}}일에 약물에 따라 투여되었습니다. GC 그룹에는 675 mg/kg의 GC 현탁액을 투여하였고, HPGC, MPGC 및 LPGC 그룹에는 200 mg/kg, 100 mg/kg 및 50 mg/kg의 HPGC, MPGC, LPGC 현탁액을 투여하였다. BC군과 MG군은 같은 부피의 0.5% CMC 용액을 1일 1회 21일 동안 투여하였다.
2.9. 독립 활동 및 입회 인원의 결정
18일 동안 투여된 각 그룹의 마우스를 독립 활동 기구에 넣고 1분 동안 환경에 적응시켰다. 그런 다음 5분 이내에 독립 활동 및 서 있는 횟수를 결정합니다.
2.10. 암실 최초 입실 잠복기 및 전기번호 판단
각 그룹의 마우스는 19일 동안 투여되어 마우스 꼬리가 결정 상자로 들어가는 암실의 작은 문을 향하도록 했습니다. 24시간(20일간 투여) 후, 5분 이내에 암실에 처음 들어가는 잠복기 및 전기번호를 결정한다.
2.11. 내장 지수 계산
2시간의 마지막 투여 후의 마우스(12시간 동안 금식). 혈액을 채취한 후, 마우스를 희생시키고 해부하였다. 흉선, 비장 및 자궁을 제거하고 장기의 젖은 무게를 잰다. 그런 다음 내장 지수(내장 지수=장기 습윤 중량 mg/체중 g)를 계산합니다.
2.12. E2, T, LH, FSH 함량 측정
2시간(12시간 금식)의 마지막 투여 후 마우스의 무게를 측정한 다음 혈액을 채취했습니다. 혈청을 분리하여 혈청 내 E2, T, LH, FSH 함량을 규격대로 결정한다.
2.13. 자궁의 형태적 변화 관찰
실험쥐의 자궁내막, 땀샘, 근육층의 변화에 따라 반정량적 기준으로 자궁을 측정하였다. 병리학적 조직 형태는 네 가지 수준으로 나눌 수 있습니다. "-" 수준은 자궁내막 상피 세포, 땀샘 및 근육층이 정상임을 의미하고; 자궁 내막 상피 세포와 땀샘의 작은 부분이 "더하기"인 수준은 위축되었고 근육층은 정상이었습니다. "플러스 플러스"의 수준은 자궁내막 상피세포와 땀샘의 일부가 위축되었고 근육층이 약간 위축되었음을 의미했습니다. "플러스 플러스 플러스"의 수준은 자궁내막 상피세포 및 땀샘이 현저하게 위축되었고, 근육층이 위축되었음을 의미하였다.
2.14. 흉선 피질의 두께 측정
흉선 피질의 평균 두께는 마우스에 마이크로미터로 측정하였다.
2.15. 비장 결절의 두께 측정
양측 비장결절의 두께는 중심동맥을 중심으로 마이크로미터로 측정하였다. 그런 다음 비장 결절의 두께로 평균을 계산합니다.
2.16. 호염기성 세포와 뇌하수체 전엽 세포의 수 계산
고전력 시야에서 10,{1}} μm2 정사각형 직사각형 프레임 영역에서 호염기성 세포와 뇌하수체 전엽 세포의 수를 계산합니다.
2.17. 통계 분석
모든 데이터는 의료 데이터의 통계 분석을 위한 SPSS 17.{1}} 통계 패키지로 분석되었습니다. 측정 데이터는 표준 편차를 더하고 빼는 평균을 사용했습니다. (-x±s). 분산의 단일 요인 분석(ANOVA)을 사용하여 그룹을 비교하고 분산 동질성을 LSD 분석 방법을 사용하고 분산의 이질성을 Games-Howell을 사용하며 등급 데이터의 날짜는 Ridit 테스트를 사용했습니다. .
3. 결과
3.1. 독립 활동의 효과와 쥐의 서 있는 횟수
Fig. 1, Fig. 2는 독립활동 데이터와 입석횟수를 보여준다. MG 마우스가 BC에 비해 현저히 감소함을 보여줍니다(P < 0.01).="" 이는="" 신선한="" 환경에="" 대한="" 호기심이="" 감소함을="" 반영합니다.="" gc,="" hpgc,="" mpgc="" 및="" lpgc의="" 마우스는="" mg에="" 비해="" 독립적인="" 활성을="" 현저하게="" 향상시킬="" 수="" 있습니다(p="">< 0.{8}}1).="" gc,="" hpgc="" 및="" mpgc에="" 있는="" 것들은="" mg에="" 비해="" 독립적인="" 활동을="" 향상시킬="" 수="" 있습니다(p="">< 0.01).="" lpgc는="" mg에="" 비해="" 서="" 있는="" 횟수를="" 약간="" 향상시킬="" 수="" 있습니다(p=""><>
그림 1. GC, HPGC, MPGC 및 LPGC가 마우스의 독립적인 활성에 미치는 영향. 독립적인 활동은 각 그룹에 대한 평균 ± SD로 기록됩니다. 모델군에 비해☆P < 0.05 및☆☆P < 0.01, LSD 분석 방법과 함께 ANOVA를 사용했습니다.
그림 2. GC, HPGC, MPGC 및 LPGC가 마우스의 서 있는 횟수에 미치는 영향. 서 있는 횟수는 각 그룹에 대한 평균 ± SD로 기록됩니다. 모델군에 비해☆P < 0.05 및☆☆P < 0.01, LSD 분석 방법과 함께 ANOVA를 사용했습니다.
3.2. 암실 최초 진입의 잠복기와 전기번호의 영향
Fig. 3, Fig. 4에서 보는 바와 같이 암실에 처음 진입한 잠복기의 데이터와 전기번호를 보면 MG 쥐가 BC에 비해 현저히 감소함을 알 수 있다(P < 0.{4="" }}1)="" mps="" 쥐의="" 기억력="" 감퇴를="" 반영합니다.="" gc,="" hpgc="" 및="" mpgc의="" 마우스는="" mg에="" 비해="" 최초="" 암실="" 진입="" 잠복기를="" 현저하게="" 증가시키고="" 전기="" 수를="" 감소(p="">< 0.01)하고="" 기억력을="" 향상시킬="" 수="" 있습니다.3.2.="" 암실="" 최초="" 진입의="" 잠복기와="" 전기번호의="">
Fig. 3, Fig. 4에서 보는 바와 같이 암실에 처음 진입한 잠복기의 데이터와 전기번호를 보면 MG 쥐가 BC에 비해 현저히 감소함을 알 수 있다(P < 0.{4="" }}1)="" mps="" 쥐의="" 기억력="" 감퇴를="" 반영합니다.="" gc,="" hpgc="" 및="" mpgc의="" 마우스는="" mg(p="">< 0.01)에="" 비해="" 암실에="" 처음="" 들어가는="" 잠복기를="" 현저하게="" 증가시킬="" 수="" 있을="" 뿐만="" 아니라="" 기억력을="" 향상시킬="" 수="">
그림 3. GC, HPGC, MPGC, LPGC가 쥐의 암실에 처음 들어가는 잠복기에 미치는 영향. 암실에 처음 들어가는 잠복기는 각 그룹의 평균 ± SD로 기록됩니다. 모델군에 비해☆P < 0.05 및☆☆P < 0.01, LSD 분석 방법과 함께 ANOVA를 사용했습니다.
그림 4. GC, HPGC, MPGC, LPGC가 쥐의 전기수에 미치는 영향. 전기 번호는 평균 ± SE로 보고됩니다. 각 그룹에 대해,☆P < 0.05 및☆☆LSD 분석과 함께 ANOVA를 사용하여 모델 그룹과 비교한 P < 0.01.
3.3. 내장지수의 효과
그림 5에서 보는 바와 같이 자궁, 흉선, 비장의 내장지수 데이터를 보면 MG 마우스가 BC에 비해 현저히 감소함을 알 수 있다(P < 0.01).="" 이는="" 자궁을="" 반영한="" 것이다.="" mps="" 마우스의="" 면역="" 기관은="" 위축됩니다.="" gc,="" hpgc="" 및="" mpgc의="" 마우스는="" mg에="" 비해="" 자궁,="" 흉선="" 및="" 비장의="" 내장="" 지수를="" 현저하게="" 향상시킬="" 수="" 있습니다(p="">< 0.01).="" lpgc의="" 마우스는="" mg에="" 비해="" 자궁의="" 내장="" 지수가="" 약간="" 향상되었습니다(p=""><>
그림 5. GC, HPGC, MPGC 및 LPGC가 마우스의 내장 지수에 미치는 영향. 내장 지수는 각 그룹에 대한 평균 ± SD로 기록됩니다. 모델군에 비해☆P < 0.05 및☆☆P < 0.01, LSD 분석 방법과 함께 ANOVA를 사용했습니다.
3.4. E2, T, LH, FSH 함량의 영향
도 6에 나타난 바와 같이 E2, T 수준의 데이터는 MG 마우스가 현저히 감소함을 나타내고, LH 및 FSH 수준의 데이터는 MG 마우스가 BC에 비해 현저히 증가함을 나타낸다(P < 0.01)="" mps="" 생쥐의="" 혈청="" 내="" 성호르몬="" 수치가="" 무질서함을="" 반영합니다.="" 모든="" 마우스="" 그룹은="" bc와="" 비교하여="" 혈청="" 내="" lh="" 수준에="" 따라="" 유의하게="" 감소했습니다(p="">< 0.{10}}1).="" gc,="" hpgc="" 및="" mpgc의="" 마우스는="" mg에="" 비해="" e2,="" t를="" 현저하게="" 개선하고="" 혈청="" 내="" lh,="" fsh="" 수준을="" 감소시킬="" 수="" 있습니다(p="">< 0.01).="" lpgc의="" 마우스는="" mg와="" 비교하여="" e2를="" 약간="" 개선하고="" 혈청="" 내="" fsh="" 수준을="" 감소시킬="" 수="" 있습니다(p=""><>
그림 6. GC, HPGC, MPGC 및 LPGC가 마우스의 E2, T, LH, FSH에 미치는 영향. E2, T, LH 및 FSH의 수준은 각 그룹에 대한 평균 ± SD로 기록됩니다. 모델군에 비해☆P < 0.05 및☆☆P < 0.01, LSD 분석 방법과 함께 ANOVA를 사용했습니다.
3.5. 자궁의 병리학적 형태 변화 관찰
그림 7, 그림 8에서 볼 수 있는 바와 같이 자궁의 형태적 변화를 마이크로미터 단위로 보면 MG 쥐가 BC에 비해 자궁에 병리학적으로 유의한 변화가 있음을 알 수 있습니다(P < 0.0="" 1).="" gc,="" hpgc의="" 마우스는="" mg에="" 비해="" 병리학적="" 형태="" 변화를="" 현저하게="" 개선할="" 수="" 있습니다(p="">< 0.01).="" mpgc의="" 마우스는="" mg와="" 비교하여="" 병리학적="" 형태학적="" 변화를="" 개선할="" 수="" 있습니다(p=""><>
그림 7. GC, HPGC, MPGC, LPGC가 생쥐 자궁의 병리학적 형태 변화에 미치는 영향. 병리학적 형태의 변화는 그룹별로 사진으로 보고된다.
그림 8. GC, HPGC, MPGC 및 LPGC가 생쥐의 병리학적 형태 변화에 미치는 영향. 병리학적 형태의 변화는 자궁을 측정하기 위한 반정량적 기준으로 보고되며, 병리학적 조직 형태는 그룹별로 4단계로 구분하여 생쥐의 수를 계산할 수 있다.
병리학적 형태의 변화는 자궁을 측정하기 위한 반정량적 기준으로 보고되며, 병리학적 조직 형태는 그룹별로 4단계로 구분하여 생쥐의 수를 계산할 수 있다.
3.6. 흉선 피질의 두께 측정
Fig. 9, Fig. 10에서 보는 바와 같이, 흉선피질의 두께 날짜를 마이크로미터로 나타내면 MG 생쥐가 BC에 비해 현저히 감소함을 알 수 있다(P < 0.="" 01)="" mps="" 모델="" 마우스를="" 설정한="" 후="" 흉선의="" 부피가="" 감소했음을="" 나타냅니다.="" hpgc의="" 마우스는="" mg에="" 비해="" 흉선="" 피질의="" 두께를="" 현저히="" 증가시킬="" 수="" 있습니다(p=""><0.01). mpgc의="" 마우스는="" mg에="" 비해="" 흉선="" 피질의="" 두께를="" 증가시킬="" 수="" 있습니다(p=""><>
그림 9. GC, HPGC, MPGC 및 LPGC가 마우스 흉선의 병리학적 형태 변화에 미치는 영향. 병리학적 형태의 변화는 그룹별로 사진으로 보고된다.
그림 10. GC, HPGC, MPGC 및 LPGC가 마우스의 흉선 피질 두께에 미치는 영향. 흉선 피질의 두께는 각 그룹에 대한 평균 ± SD로 기록됩니다. 모델군에 비해☆P < 0.05 및☆☆P < 0.01, LSD 분석 방법과 함께 ANOVA를 사용했습니다.
3.7. 비장 결절의 두께 측정
그림 11, 그림 12에서 볼 수 있듯이 마이크로미터 단위로 비장 결절의 두께 날짜는 MG 마우스가 BC에 비해 유의하게 감소했음을 보여줍니다(P < 0.01="" )="" mps="" 모델="" 마우스를="" 설정한="" 후="" 비장의="" 부피가="" 감소했음을="" 나타냅니다.="" hpgc의="" 마우스는="" mg에="" 비해="" 비장="" 결절의="" 두께를="" 현저하게="" 증가시킬="" 수="" 있습니다(p="">< 0.01).="" mpgc의="" 마우스는="" mg에="" 비해="" 비장="" 결절의="" 두께를="" 증가시킬="" 수="" 있습니다(p=""><>
그림 11. GC, HPGC, MPGC 및 LPGC가 쥐의 비장의 병리학적 형태 변화에 미치는 영향. 병리학적 형태의 변화는 그룹별로 사진으로 보고된다.
그림 12. GC, HPGC, MPGC 및 LPGC가 마우스의 비장 결절 두께에 미치는 영향. 비장 결절의 두께는 각 그룹에 대한 평균 ± SD로 기록됩니다. 모델군에 비해☆P < 0.05 및☆☆P < 0.01, LSD 분석 방법과 함께 ANOVA를 사용했습니다.
3.8. 호염기성 세포와 뇌하수체 전엽 세포의 수 계산
도 13, 도 14에서 보는 바와 같이, 호염기성 세포와 뇌하수체 전엽 세포의 수의 날짜는 MG 마우스가 BC에 비해 현저히 감소함을 나타낸다(P < 0.0="" 1)="" mps="" 모델="" 마우스를="" 확립한="" 후="" 분비="" 성선="" 자극="" 호르몬의="" 세포="" 공급원의="" 수가="" 감소함을="" 나타냅니다.="" 모든="" 투여="" 약물군은="" mg에="" 비해="" 호염기성="" 세포의="" 수를="" 현저하게="" 증가시킬="" 수="" 있다(p="">< 0.01).="" gc,="" hpgc="" 및="" mpgc의="" 마우스는="" mg에="" 비해="" 뇌하수체="" 전엽="" 세포의="" 수를="" 현저히="" 증가시킬="" 수="" 있습니다(p=""><>
그림 13. GC, HPGC, MPGC 및 LPGC가 마우스 뇌하수체의 병리학적 형태 변화에 미치는 영향. 병리학적 형태의 변화는 그룹별로 사진으로 보고된다.
그림 14. GC, HPGC, MPGC 및 LPGC가 마우스의 호염기성 세포 및 뇌하수체 전 세포 수에 미치는 영향. 호염기성 세포와 뇌하수체 전엽 세포의 수는 각 그룹에 대한 평균 ± SD로 기록됩니다. 모델군에 비해☆P < 0.05 및☆☆P < 0.01, LSD 분석 방법과 함께 ANOVA를 사용했습니다.
4. 토론
의 기록갱년기 증후군고서에서는 주로 '백합병', '지그재그' 증후군, '우울증', '월경 이상' 등의 설명에 흩어져 있다(Chen et al., 2015, Ma and Chen, 2015). 40세가 넘은 여인의 경우, 은기가 반으로 잘렸다. Tiangui가 말랐습니다. 신장 기가 점차 감소했습니다. Yin Jing이 부족했습니다. 음과 양의 균형이 상실되었습니다. 주요 성능은 월경 장애 또는 폐경이 나타나며, 이는 해열과 발한, 감정적 과민성, 안절부절, 두근거림 및 불면증, 요통, 얼굴과 팔다리의 부종, 현기증, 이명, 개미 기는 병과 같은 피부 느낌이었다. 월경이 오거나 끊기는 내적 원인은 신장의 기(氣)가 심하게 쇠퇴하는 것입니다. 신장결핍증의 근본 원인은갱년기 증후군(Tan et al., 2013), 신장은 "선천적 기초"라고 불리는 인간 생명의 기원입니다. 신장 정수의 흥망성쇠는 성숙과 쇠퇴의 성장과 생식 기능을 지배합니다(Wang and Huang, 2011). 연구에 따르면 난소 기능 저하가 신장 결핍 증후군의 본질이며 신장의 음양 불균형은 내분비 장애 및 자율 신경계 기능 장애와 밀접한 관련이 있습니다. E2, FSH, LH의 변화는 신장 결핍과 신장 음양 불균형의 표현이다(Shi et al., 2007). 신장양약은 시상하부-뇌하수체 난소축의 호르몬 수치를 조절하거나 난소 기능 조절에 직접적인 역할을 하는 데 사용됩니다. 현대 한의학에서는 인후염의 원인과 병인을갱년기 증후군신장 결핍증입니다(Razali and Said, 2017).
이 연구는 MPS 마우스 모델을 재현하기 위해 등 양쪽에 있는 난소의 완전한 절제를 사용했습니다. 여성의 90% 에스트로겐은 난소에서 분비되고 난소는 제거되었습니다. 인위적으로 에스트로겐 수치를 갑자기 낮추어 MPS를 시뮬레이션한 것입니다. 이 모델은 성공률, 안정성 및 신뢰성 등이 높은 클래식 모델이었습니다. 자립활동과 입석횟수, 암실 최초 입실잠복기, 전기번호를 통해 약에 의한 학습 및 기억기능의 향상과 신선한 환경에 대한 호기심을 관찰하였다. 난소 기능은 성 호르몬 분비가 감소함에 따라 감소했습니다. 또한, 성선 자극 호르몬은 MPS 환자에서 증가했습니다. 혈청 내 E2, T 수치는 MPS 증상이 없는 사람보다 낮았고 LH, FSH 수치는 MPS 증상이 없는 사람보다 유의하게 높았습니다. 따라서 혈청 내 E2, T, FSH 및 LH 수치 측정을 통해 MPS를 식별하고 MPS 질환에 대한 약물의 영향을 반영하는 시각적 지표로 사용할 수 있습니다. 연구에 따르면 난소 기능 저하가 신장 결핍의 의미이며 E2, T, FSH, LH의 변화는 일종의 신장 결핍의 표현임을 보여주었다(Li et al., 2014, Cheng and Tian, 2012).시스탄체면역을 강화하기 위해 신장을 보충하는 효과를 통해서였다(Zhang et al., 2009, Shareef et al., 2017).
우리는 혁신적인 MPS를 치료하기 위해 신장 보충 약을 사용했습니다. 결과는 또한 PGC가 MPS 마우스의 장애 호르몬 수준을 개선하고 혈청 내 E2, T, LH 및 FSH 수준을 증가시킬 수 있음을 보여주었습니다. 한편, MPS에서 신장 결핍이 기본이라는 문헌에 따라 마우스의 자궁, 흉선, 비장 및 뇌하수체의 병리학적 변화를 개선할 수 있습니다.
5. 결론
우리 연구 결과에 따르면 PGC는 MPS에 좋은 치료 효과가 있음을 나타냈습니다. 즉, 독립적인 활동과 서 있는 횟수, 암실에 처음 들어가는 잠복기, 흉선, 비장 및 자궁의 내장, E2, T를 다음과 같이 증가시킬 수 있습니다. 뿐만 아니라 전기 번호, LH 및 FSH를 줄입니다. 페닐에타노이드 배당체는시스탄체MPS 연구의 높은 효율성과 편의성을 위해갱년기 증후군. 품질 표준은 제어하기 쉽고 약물의 혁신적인 연구 및 산업화 개발에 도움이 됩니다. MPS 치료에 대한 새로운 사고 방식을 제공합니다.
이해 상충
저자는 보고할 이해 상충이 없습니다.
감사의 말
이 연구는 중국 국립자연과학재단(81274154)의 지원을 받았습니다. 허난 과학 기술 혁신 팀(2012IRTSTHN011); 정저우시 과학기술혁신팀(131PCXTD612); 정저우시 중약 변혁을 위한 핵심 의료 연구소(121PYFZX1820).
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